6孔板，Synthemax-R表面，无菌，独立包装，1个/包

基因细胞内导入技术

瞬时表达效果可采用磷酸钙沉淀法、电击法、脂质体法等；若目的要获取永久性稳定表达应选用逆转录病毒等病毒载体导入法。下面介绍几种常用基因转染方法。 二、物理化学法基因转染技术(一)磷酸钙-DNA共沉淀法核酸以磷酸钙-DNA共沉淀物的形式出现时，可使DNA附在细胞表面，利于细胞吞入摄取，或通过细胞膜脂相收缩时裂开的空隙进入细胞内，进入细胞的DNA仅有1%～5%可以进入细胞核中，其中仅有不到1%的DNA可以与细胞DNA整合，在细胞中进行稳定表达，基因转导的频率大约为10-4，这项技术能用于任何DNA导入

各类细胞培养小结

表面的透明软骨，以磷酸缓冲液（PBS含青霉素、链霉素各100U/L）冲洗2遍，将软骨剪切成1－3mm3 左右碎块，0.25%胰蛋白酶先消化30-35分钟，PBS浸洗2遍；后置于50ml玻璃培养瓶，加0.1%Ⅱ型胶原酶(DMEM配制)，37消化3.5－4.5小时，每小时置37℃恒温振荡箱振荡5min。直到软骨块大部分呈肉眼可见的絮状物，倒置显微镜下观察，软骨细胞大部分分离后，以弯头吸管轻轻吹打，细胞悬液以1200r/min离心7分钟，弃上清，以含10％新生牛血清DMEM的培养液终止消化，离心弃上清

细胞培养大攻略

？   一般使用之trypsin-EDTA 浓度为0.05% trypsin-0.53mMEDTA.4 Na。第一次开瓶后应立即少量分装于无菌试管中， 保存于-20 °C，避免反复冷冻解冻造成trypsin 之活性降低， 并可减少污染之机会。   46、欲将一般动物细胞离心下来，其离心速率应为多少转速？   欲回收动物细胞， 其离心速率一般为300x g (约1,000 rpm)，5 - 10 分钟， 过高之转速， 将造成细胞死亡。   47、细胞