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大量
- 现货状态：
现货
- 供应商：
Eppendorf中国
- 规格：
包
试用装包装：5个/包(规格：2 ml)
试用规则：
1、申请试用时请描述实验用途说明（简述您计划如何使用所申请的样品进行实验等），我们会在收到申请后进行审核，审核通过的申请人将获得样品试用资格。10个工作日左右寄出试用
2、试用结束后，希望您能提供关于样品使用情况的反馈，包括但不限于样品的性能、使用体验、改进建议等（样品申请的袋子里有扫描二维码）。试用反馈截止日期：2025年8月31日
3、对于提供质量较高的试用反馈的试用者，将赠送 Eppendorf 准备的无线鼠标一份。（限量20份赠完即止）
4、每人每种产品可最多申请1包，累计最多可申请3个品类，其他品类试用链接如下 ：
Eppendorf ep Dualfilter T.I.P.S. 双滤芯吸头
Eppendorf 微量离心管
Eppendorf LoBind 低蛋白吸附离心管
Eppendorf 25 mL 锥底离心管
*本活动最终解释权归Eppendorf所有。
Eppendorf LoBind 低吸附离心管
Eppendorf LoBind 低吸附技术介绍
不使用任何表面涂层，其材质使用的双链特殊聚合物表面构成亲水表面，可防止DNA 样品或蛋白样品吸附在内壁表面上，使蛋白样品回收率达95% 以上。
使用Eppendorf LoBind 低吸附表面的产品包括：离心管、PCR 板及深孔板。
产品特性
> 显著降低 DNA 损失
> 普通反应条件下，损失低于 0.3%
> 高盐环境下，损失低于 1%
> 无表面涂层，如硅化处理，不会污染样品
> 不含 DNA、DNase、RNase 和 PCR 抑制剂（PCR clean 洁净级）
> 提供 0.5 mL、1.5 mL、2.0 mL 、 5.0 mL、15 mL、25 mL 和 50 mL 体积的离心管
> 可选择 Safe-Lock 锁扣盖或者螺旋盖
> 离心耐受性最高可达 30,000×g
> 透明性好，便于观察
LoBind 低蛋白吸附管
随着 Eppendorf 微量离心管的发展，Eppendorf 推出了一系列适用于蛋白、抗体、病毒和肽样品制备的低蛋白吸附耗材产品。相比其它品牌的离心管采用饱和 BSA 或硅化处理来提高样品的回收率，Eppendorf 低蛋白吸附管通过材质表面打磨，不会降低酶活性或变性反应，可近100% 回收样品。
产品特性
> 提高蛋白样品回收率（达 100%，FITC-BSA 1 μg / mL, 室温下保存 24 h）
> 高纯度聚丙烯材质和优化的生产工艺，无表面涂层如硅化处理，不会污染样品
> 不含 DNA、DNase、RNase 和 PCR 抑制剂（PCR clean 洁净级）
> 提供 0.5 mL、1.5 mL、2.0 mL 、 5.0 mL、15 mL、25 mL 和 50 mL 体积的离心管
> 可选择 Safe-Lock 锁扣盖
> 离心耐受性最高可达 25,000×g
> 透明性好，便于观察
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文献和实验Enhanced recovery of low concentration protein and peptide solutions on ultra-low binding microplates | Future Science OA (future-science.com)
1.加入 solution.III，经 10 分钟离心后细菌沉淀怎么不结实，有的漂浮在液面，有的贴在离心管壁上，一摇晃即破碎脱落下来？ 细菌的用量太少，导致产生的沉淀主要是盐分的沉淀，因为缺少变性的细菌蛋白和细菌基因组 DNA 的缠绕，沉淀就显得不结实。解决方法：将细菌的用量增加。 2.加入 soln.III，经 10 分钟离心后细菌沉淀怎么不结实，呈大块的水泡状，上清较少？ （1）使用了过多的细菌，导致菌体未被有效裂解。解决方法：将细菌用量减半。 （2）细菌悬浮不充分,存留小菌块, 导致
。Picogreen的结果显示，DNA的得率要比分光光度法读数低60%。有些样品RNA能推高读数高达 70%。如此大的误差必定会对后续实验结果产生影响。 好消息是，MOBIO的试剂盒设计上只绑定DNA，不吸附RNA。从上图结果看来，确保了分光光度法读书的准确性。根据需要，通过调整绑定条件还能增加或减少小片段核酸或RNA的捕捉效率。 所以，总结最后：做纯化前后给DNA跑电泳。检查浓度（得率）和完整新（DNA分子量大小），并与备用检测方法（分光光度法或Picogreen）做对比检查是否存在
壁上形成一些微孔通道，使得DNA分子直接与裸露的细胞膜脂双层结构接触，并引发吸收过程。具体操作程序因转化细胞的种属而异。对于大肠杆菌来说，大约50ml的细菌与DNA样品混合后，置于装有电极的槽内，然后选用大约25微法拉第、2.5千伏和200欧姆的电场强度处理4.6毫秒，即可获得理想的转化效率。虽然电穿孔法转化较大的重组质粒（＞100Kb）的转化效率比小质粒（～3Kb）低一千倍，但这比Ca2 诱导和原生质体转化方法理想，因为这两种方法几乎不能转化大于100Kb的质粒DNA。对于几乎所有的细菌均可找到一套
