游离脂肪酸(NEFA)测定试剂盒

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  • 2025年07月13日
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      信帆生物

    游离脂肪酸(NEFA)测定试剂盒
    (比色法)
    []:此实验须用分光光度计比色,不能用半自动、全自动生化分析仪及酶标仪比色。
    一、测定原理:
    游离脂肪酸(NEFA)能与铜离子结合形成脂肪酸的铜
    盐而溶于氯仿中,其含量与游离脂肪酸含量成正比。用铜试
    剂测定其中铜离子的含量,即可推算出游离脂肪酸的含量。
    二、试剂组成与配制(50 /48 样):
    试剂一:氯仿(分析纯),自备。
    试剂二:缓冲液,40mL×1 瓶,室温保存 6 个月。
    试剂三:铜试剂,甲液 30mL×1 瓶,乙液 30mL×1 瓶,丙
    5mL×1 瓶,4℃保存 6 个月。试剂三铜试剂的
    配制:按甲液∶乙液∶丙液=1091 的比例进行
    配制,需多少配多少,配好后 4℃可保存二周。
    试剂四:显色剂,粉剂×2 支,稀释液 10mL×2 瓶,4℃保存
    3 个月。试剂四显色剂的配制:临用时将 1 支粉剂
    溶解于 1 10mL 稀释液中,配好后 4℃可保存二周。
    试剂五:棕榈酸标准品粉剂×2 支,溶剂 50mL×1 瓶,4℃
    3 个月。1000µmol/L 棕榈酸标准品的配制:
    一支粉剂用溶剂溶解后定容至 20mL(注意用溶剂
    将装粉剂的小离心管洗净)。
    试剂六:双蒸水 40mL×1 瓶(做空白管用)。
    游离脂肪酸(NEFA)测定试剂盒
    []:详细操作步骤:
    1、充分混匀准确抽提 2 分钟(用秒表计时)。如果您没有磨
    口试管,可用普通玻璃试管代替,但必须用保鲜薄膜封
    口,以便防止液体挥发及溅出。
    2、抽提完后以 3500 /分离心 10 分钟,若发现下层液体呈
    半凝固状态、凝固层较厚或下层液体不足 2mL 时,则可
    用小玻棒或移液器吸嘴轻轻搅拌后再次离心,直至分层
    清楚。
    3、 然后用注射器接上硬膜外麻醉针套吸取上层液体及凝固
    层并弃之。
    4、另取一个注射器及硬膜外麻醉针心针套,将硬膜外麻醉针
    心插入针套中,小心插入下层抽提液中,拔出针心,接上
    注射器,吸取下层抽提液 2.32.5mL 至另一试管中。(这
    样可避免上层液体及凝固层混入下层液体中,若混入上
    层液体及凝固层,则需重新离心后再取下层抽提液,否则
    会影响结果。)若偶然发现抽提液有雾状混浊,可放入
    37℃水浴 12 分钟即可。
    5、再从上述试管中准确吸取 2mL 下层抽提液加入另一试管
    中,加显色剂进行显色。
    游离脂肪酸(NEFA)测定试剂盒
    五、注意点:
    1、实验必须用分光光度计比色,不可用酶标仪、半自动及全
    自动生化分析仪比色(有机溶剂对这些仪器会有损坏)。
    2、显色前吸取下层抽提液时,吸管不要触及管壁,以免沾染
    管壁上粘着的铜试剂。下层抽提液必须清澈,否则会使结
    果偏高。
    3、胆红素可被试剂一抽提而干扰比色,故黄疸血清须做一对
    照管,即最后不加显色剂而用正丁醇代替,在测定管光密
    度读数中减去此对照管的光密度读数。
    附录:实验中可能出现的问题
    在做游离脂肪酸的时候空白很高,也有的老师操作结果中标
    准和测定结果都很高,甚至能达到 3.000 以上,大多数情况下是
    由于操作问题引起的,下面是关于 NEFA 实验所要注意的几个问
    题:
    1在做组织样本的时候,不能将样本一起做成匀浆,因为组织
    在做成匀浆后,很多指标含量都会快速下降。一般应该是上
    午做好匀浆,下午就要测定完。样本太多一次不能操作完的,
    当天能做几个样本就做几个匀浆,最好是按分组取样,每组
    均要有样本参与,这样能减少批间差。
    2关于移液枪的使用,建议刚做实验的老师用倒退法加样,以
    减少误差。并且在实验前最好能够多加练习,如反复移蒸馏
    水,当加样熟练后,可进一步用无水乙醇和血清进行练习,
    这样可以提高加样的准确性。
    3NEFA 的混匀过程中,最好用橡皮塞塞住试管口后,按住
    试管上部混匀。切忌握住试管中部或者下部,因为这样会使
    混匀不充分,导致抽提不充分。
    4实验时所用器皿应当仔细洗刷并且烘干,如果有污染,则可
    能会对实验造成不必要的损失。例如:在配制铜试剂时,烧
    杯不干净,则可能导致配制出的铜试剂浑浊,而非澄清透亮。
    如果在实验过程中试管不干净,也可能引入杂蛋白,甚至造
    成空白管也能出现中间蛋白层的现象。
    5试剂配制时应按照说明书的顺序进行。例如:在铜试剂配制
    时,如果按照打乱顺序配制,即不按照甲、乙、丙的顺序,
    那么也有可能会使配制好的铜试剂出现浑浊现象,从而不能使用。
    6实验时的自备试剂不能有污染,特别是蒸馏水,很多实验失
    败都是因为最容易忽略的蒸馏水受到了污染,引入杂离子或者杂蛋白。
    7离心后的上层铜试剂建议客户用一次性注射器吸出。在吸下
    层抽提液时,应该用适当大小的穿刺针,如果穿刺针过大,
    例如用牛的穿刺针,有可能携带过多的上层铜试剂或者中间
    的蛋白层,如果吸到上层的铜试剂,在比色中会使吸光度特
    别高,引起结果偏差很大,并且做不同实验时所用的穿刺针
    不应交叉使用,最好每个实验所用的玻璃移液管或者穿刺针
    能够固定不变。(我所能够提供一次性注射器和相应的穿刺
    针)(穿刺针即硬膜外麻醉针)
    8在比色过程中,应保证分光光度计使用恰当无误。比方说有
    的老师在调零时,只用一个比色皿调零,另一个比色皿没有
    冲洗和调零就直接使用,会造成初始值就偏高的现象,因为
    比色皿会吸附颜色。
    9在配制试剂过程中,最好能够严格按照我们说明书上的量进
    行准确量取,以加强实验的准确性,不能随便倒取。
    游离脂肪酸(NEFA)测定试剂盒

     

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