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文献和实验胶体金标记蛋白质的原理,一般认为是由于pH值等于或稍偏碱于蛋白质等电点时,蛋白质呈电中性,此时蛋白质分子与胶体金颗粒相互间的静电作用较小,但蛋白质分子的表面张力却最大,处于一种微弱的水化状态,较易吸附于金颗粒的表面。由于蛋白质分子牢固地结合在金颗粒的表面,形成一个蛋白层,阻止了胶体金颗粒的相互接触,而使胶体金处于稳定状态,如果=低于蛋白质的等电点时,蛋白质带正电荷,胶体金带负电荷,二者极易静电结合形成大的聚合物。如果pH高于蛋白质等电点时,蛋白质带负电荷,与金颗粒的负电荷相互排斥而不能互相
银染色法(Dot-Immuno-Gold-Silver Straining Method,Dot-IGSS),利用NC膜可以与带负电荷的蛋白质产生较强的疏水作用,从而使目标蛋白与NC膜产生较强亲和力的特性,以及NC膜易于被封闭的特点,使用NC膜作为固相载体。先使被FMDV免疫过的牛血清(含FMDV抗体蛋白)与NC膜结合,然后使用合适的封闭液将NC 膜未结合蛋白的位点封闭,再用胶体金标记过的抗FMDV抗体蛋白的二抗与FMDV免疫过的牛血清作用(利用抗原抗体的特异性结合反应),将未特异性结合的蛋白
其等电点,标记物一般不会与胶体金解离(啥,您要试试p H 14的?! )。如果您加入盐,胶体金仍然能保持一颗红心不变的。此类标记物疏水相互作用/配位键>静电斥力,其分子量一般比较大,如抗体。当然,缓冲体系就比较好办了。3、 标记物的量按照常规的方法,最低稳定量+10-20%是好的,但俺们认为您最好做一下功能性实验(灵敏度,稳定性),可能您会发现再多加一些蛋白,如抗体,其灵敏度和稳定性会更好一些。这是因为在浓度高的情况下标记,抗体倾向与利用F c片段与胶体金结合,这样就有较多Fab片段处于游离
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