高致病性猪蓝耳病毒实时荧光RT-PCR检测试剂盒

实时荧光定量PCR在人感染猪流感诊断中的作用

，其中规定了确诊病例的诊断方法：具有急性发烧呼吸道疾病的临床症状并且经实时荧光定量PCR （real-time RT-PCR）或病毒分离培养 （viral culture）实验室检测方法检验证实感染A（H1N1）型猪流感病毒。卫生部办公厅于4月30日印发了《人感染猪流感预防控制技术指南（试行）》的通知》[7],其中在实验室检测和病例诊断报告章节，内容如下：检测程序呼吸道标本应首先应用real time RT-PCR方法检测A型流感病毒的M基因、Swine（ H1N1）的HA基因和NP基因，以及质控对照

实时荧光PCR检测技术

。因此，以PCR技术为代表的核酸诊断技术在临床诊断中得到日益广泛的应用。传统的PCR检测模式 传统的PCR检测模式一般需要三个步骤：1.首先需要对待测标本进行处理：通过裂解、纯化，提取标本中的病原体核酸（DNA或RNA）作为PCR扩增的模板；2. 采用PCR或RT-PCR技术对提取到的病原体核酸进行扩增；3.检测PCR扩增产物，检测方法包括凝胶电泳和类似于酶免反应的PCR-ELISA等。实时荧光PCR检测技术 近年来，PCR技术有了重大改进。将传统PCR检测模式中的PCR扩增和检测相结合（即在同一个密闭

基因表达之RT-PCR之我见

s18s定还是用SB GAPDH或者β-actin都是,但是Northern得出的是绝对组织丰度,而实时荧光定量RT-PCR虽然准确(定量)但是得出的是相对表达丰度,不管使用β-actin还是用18srRNA.至于常规的通过跑电泳的所谓”定量”RT-PCR那就远了去了。 另外，似乎有人认为要做的好，就要把条件摸得哈好的，一旦很好，就不更改，PCR条件，徨论Taq酶，窃以为实不足取，为何？我说的“摸”是指循环数和模板，如果连taq也要固定下来，其不是别人重复不了了（了用的太多了）？因为检测的是相对量