- ￥1200
- xybio
- 详见说明书
- XYPA10556
- 上海
- 2026年01月05日
企业认证
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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 供应商：
上海烜雅生物科技有限公司
- 库存：
100
- 样本：
血清、血浆及相关液体样本
- 标记物：
HRP标记
- 适应物种：
植物
- 应用：
仅供科研
- 检测方法：
双抗夹心
- 检测范围：
详见说明书
- 规格：
96T
植物苯丙氨酸解氨酶(PAL)ELISA试剂盒
使用说明书
检测原理
试剂盒采用双抗体一步夹心法酶联免疫吸附试验（ELISA）。往预先包被抗体的包被微孔中，依次加入标本、标准品、HRP标记的检测抗体，经过温育并彻底洗涤。用底物TMB显色，TMB在过氧化物酶的催化下转化成蓝色，并在酸的作用下转化成最终的黄色。颜色的深浅和样品中的指标呈正相关。用酶标仪在450nm 波长下测定吸光度（OD 值），计算样品浓度。
样品收集、处理及保存方法
1. 血清：使用不含热原和内毒素的试管，操作过程中避免任何细胞刺激，收集血液后，3000转离心10分钟将血清和红细胞迅速小心地分离。
2. 血浆：EDTA、柠檬酸盐或肝素抗凝。3000转离心30分钟取上清。
3. 细胞上清液：3000转离心10分钟去除颗粒和聚合物。
4. 组织匀浆：将组织加入适量生理盐水捣碎。3000转离心10分钟取上清。
5. 保存：如果样本收集后不及时检测，请按一次用量分装，冻存于-20℃，避免反复冻融，在室温下解冻并确保样品均匀地充分解冻。
自备物品
2.实验中不用的板条应立即放回自封袋中，密封（低温干燥）保存。
3.浓度为0的S0号标准品即可视为阴性对照或者空白；按照说明书操作时样本已经稀释5倍，最终结果乘以5才是样本实际浓度。
4.严格按照说明书中标明的时间、加液量及顺序进行温育操作。
| 名称 | 96孔配置 | 48孔配置 | 备注 |
| 微孔酶标板 | 12孔×8条 | 12孔×4条 | 无 |
| 标准品 | 0.3mL*6管 | 0.3mL*6管 | 无 |
| 样本稀释液 | 6mL | 3mL | 无 |
| 检测抗体-HRP | 10mL | 5mL | 无 |
| 20×洗涤缓冲液 | 25mL | 15mL | 按说明书进行稀释 |
| 底物A | 6mL | 3mL | 无 |
| 底物B | 6mL | 3mL | 无 |
| 终止液 | 6mL | 3mL | 无 |
| 封板膜 | 2张 | 2张 | 无 |
| 说明书 | 1份 | 1份 | 无 |
| 自封袋 | 1个 | 1个 | 无 |
试剂的准备
20×洗涤缓冲液的稀释：蒸馏水按1：20稀释，即1份的20×洗涤缓冲液加19份的蒸馏水。
洗板方法
6.每孔加入底物A、B各50μL，37℃避光孵育15min。
7.每孔加入终止液50μL，15min内，在450nm波长处测定各孔的OD值。
绘制标准曲线：在Excel工作表中，以标准品浓度作横坐标，对应OD值作纵坐标，绘制出标准品线性回归曲线，按曲线方程计算各样本浓度值。
试剂盒性能
4.重复性：板内、板间变异系数均小于15%。
6.有效期：6个月
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文献和实验相关专题一、原理 苯丙氨酸解氨酶（phenylalanineammonialyase，PAL）催化苯丙氨酸的脱氨反应，使NH3释放出来形成反式肉桂酸。此酶的在植物 体内次生物质（如木质素等）代谢中起重要作用。根据其产物，反式肉桂酸在290nm处吸光度的变化可以测定该酶的活性。 二、材料、仪器设备 及试剂 （一）材料：马铃薯块茎 （二）仪器设备：1. 紫外分光光度计 ；2. 离心机；3. 研钵；4. 吸滤瓶；5. 红光装置；6. 打孔器。 （三）试剂
L-苯丙氨酸解氨酶L－phenylalanin ammo－nialyase
缩写 PAL。是催化直接脱掉 L-苯丙氨酸上的氨而生成反式桂皮酸的酶。 EC． 4． 3． 1． 5。是 1961年 J． Koukol， E． Conn在大麦中发现的。存在于高等植物、酵母、菌类的可溶性部分。推测分子量为 30万。这是一个可把苯丙氨酸用于酚类化合物合成的酶。在很多情况下，其反应成为酚类化合物合成的有步骤的速率阶段。在组织中的活性可随外界因素而发生显著变化，用光照，病伤害，植物激素处理等会使活性显著增加。另外有时还受光敏色素所支配。在多数情况下，在组织中活性
PCR PRIMER DESIGN AND REACTION OPTIMISATION
). A universal primer mixture for sequence determination at the 3' ends of cDNAs. Analytical Biochemistry 190:314-316. Wu DY, Ugozzoli L, Pal BK, Qian J, Wallace RB (1991). The effect of temperature and oligonucleotide primer length on the specificity
