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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
32
- 英文名:
详见说明书
- 保质期:
6个月
- 供应商:
帛科
- 保存条件:
2-8℃冷藏
- 规格:
50管/24样/100管/48样
| 规格: | 50管/24样 | 产品价格: | ¥126.0 |
|---|---|---|---|
| 规格: | 100管/48样 | 产品价格: | ¥240.0 |
Ca++Mg++ ——ATP酶生化检测试剂盒测定意义:Ca++ Mg++-ATP酶广泛分布于植物、动物、微生物和细胞中,可催化ATP水解生成ADP和无机磷。测定原理:根据Ca++ Mg++-ATP酶分解ATP生成ADP及无机磷,通过测定无机磷的量来确定ATP酶活性高低。需自备的仪器和用品:可见分光光度计/酶标仪、水浴锅、台式离心机、可调式移液器、微量石英比色皿/96孔板、研钵、冰和蒸馏水。
公司产品仅供科研实验,不得用于临床诊断!
产品名称:Ca++Mg++ ——ATP酶生化检测试剂盒
规格:50管/24样、100管/48样
产品分类:氧化磷酸化系列
实验类型:可见分光光度法、微量法
试剂的组成和配制:
提取液一:液体100mL×1瓶,4℃保存。
提取液二:液体100mL×1瓶,4℃保存。
试剂一:粉剂×1瓶,-20℃保存;
试剂二:液体20mL×1瓶,4℃保存;
试剂三:液体14uL×1支,4℃保存;
土壤脱氢酶(SDHA)生化试剂盒(可见分光光度法)50管/48样可见分光光度法
土壤过氧化物酶(SPOD)生化试剂盒(微量法)100管/96样微量法
土壤过氧化物酶(SPOD)生化试剂盒(可见分光光度法)50管/48样可见分光光度法
土壤淀粉酶生化试剂盒(微量法)100管/48样微量法
土壤淀粉酶生化试剂盒(可见分光光度法)50管/24样可见分光光度法
土壤亚硝酸还原酶(SNiR)生化试剂盒(微量法)100管/48样微量法
Ca++Mg++ ——ATP酶生化检测试剂盒沃尔巴克氏菌通用PCR检测试剂盒Wolbachia spp.PCR
班氏丝虫PCR检测试剂盒Wuchereria bancroftiPCR
新疆出血热病毒PCR检测试剂盒Xinjiang Hemorrhagic Fever Virus(XHFV=CCHFV)RTPCR
苛养木杆菌PCR检测试剂盒Xylella fastidiosaPCR
木丝霉PCR检测试剂盒Xylohypha bantaniaPCR
亚巴猴肿瘤病毒病毒PCR检测试剂盒Yaba Monkey Tumor Virus(YMTV)PCR
黄热病病毒疫苗株PCR检测试剂盒Yellow Fever Virus( vaccine strain,17D)17D RTPCR
黄热病病毒PCR检测试剂盒Yellow Fever Virus(YFV)RTPCR
黄头病毒PCR检测试剂盒Yellow Head Virus(YHV)RTPCR
组织样本的前处理:
①总GAPDH酶提取:建议称取约0.1g样本,加入1mL提取液一,冰浴匀浆后超声破碎(冰浴,200W,破碎3s,间歇7s,总时间1min),然后4℃,8000g离心10min,取上清测定。
②胞浆和叶绿体GAPDH酶的分离:按照植物组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g样本,加入1mL提取液一),冰浴匀浆后于4℃,200g离心5min,弃沉淀,取上清在4℃,8000g离心10min,取上清用于测定胞浆GAPDH酶活性,取沉淀加1mL提取液二,震荡溶解后超声破碎(冰浴,200W,破碎3s,间歇7s,总时间1min),然后4℃,8000g离心10min,取上清测定叶绿体中GAPDH酶活性。
建议测定总GAPDH酶活性,按照步骤①提取粗酶液,若需要分别测定胞浆和叶绿体中的GAPDH,则按照步骤②提取粗酶液。
细菌或培养细胞的前处理
先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104个):提取液一体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细菌或细胞加入1mL提取液一),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率20%或200W,超声3s,间隔10s,重复30次);8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
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文献和实验启动因子并孵育一段时间后开始,持续1-3min,一般应用于酶类项目,可以使用因数法来计算待测浓度。 生化检测原理示意图 过渡区对应是固定时间法,是终点法中存在一种特殊情况,指在时间-吸光度曲线上选择两个读数点,此两点既非反应初始吸光度亦非平衡点吸光度,这两点的吸光度差值用于结果计算。目的是解决某些化学反应的非特异性问题,提高准确度。 平衡区对应的是终点法,按测光点的个数分为:一点终点法、两点终点法。 一点终点法是指在反应到达平衡点,即在时间-吸光度曲线上吸光度不再改变时,选择一个测光点计算待测
Purification of a Membrane Protein (Ca2+/Mg2+-ATPase) and Its Reconstitution into Lipid Vesicles
Purification of membrane proteins of necessity requires the use of detergents to solubilize the proteins prior to their isolation. Although reconstitution of membrane proteins has been achieved without the use of detergents (e.g
Zymolyase Dissolve in 10% glucose. Store aliquots (25 µl) at 20o C in common freezer for stock solutions Use once and dispose Comments: alternative is to dissolve in SCE, 40% gycerol, 20 mg/ml final. Can use
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