Mouse皮下移植瘤

1.肿瘤的来源：
人的胸腹水，手术切除的肿瘤，小鼠自发或诱发的肿瘤，或者已经建系的肿瘤细胞株。

 2.移植瘤的建立一般是选择自发瘤或诱发瘤组织块，或人的原代肿瘤细胞为佳。
已建立的肿瘤细胞株经过多次传代后，其生物学特性已发生一定程度的改变，如形态学上的改变、恶性程度以及转移特 性的变化等

3.移植瘤的接种方法
1）腹水瘤移植接种法
2）实体瘤移植接种法
（1）小块接种法
（2）肿瘤组织浆接种法：
（3）培养细胞接种

4.腹水型肿瘤模型的制作 常规复苏肿瘤细胞并培养，取指数生长期肿瘤细胞，离心收集，显微镜下细胞计数，调整细胞浓度为1×107／ml，取健 康小鼠，无菌条件下每只小鼠腹腔接种细胞悬液0.2-0.5 ml，约8-10 d成腹水瘤。
5.皮下肿瘤模型的制作
1）.细胞接种法：
取腹腔接种肿瘤细胞7-l0d 、腹水生长良好的小鼠脱颈处死，无菌抽取腹水以生理盐水稀释调整细胞浓度为1×107／ ml（一般以生理盐水l:2-l:3倍稀释），每只0.2 ml接种到小鼠腋窝皮下，建立小鼠皮下移植瘤模型。抽出的腹水应为白色之 浓稠液体为佳。.直接将体外培养的指数生长期肿瘤细胞，离心收集，显微镜下常规细胞计数，调整细胞浓度为1×107／ml， 取健康小鼠，无菌条件下每只小鼠皮下接种细胞悬液0.2 ml。
2）.组织块接种法：
先用细胞接种法建立皮下肿瘤模型。 选择接种后7-l0d，肿瘤生长旺盛且无溃破的动物，脱颈处死后消毒操作部位皮 肤然后切开，选择生长良好的瘤组织置于无菌平皿内(平皿内放置少许生理盐水或细胞培养液)。将肿瘤组织剪成2-3mm的小 块，向无菌套管内塞人一小块，接种于健康动物前腋窝皮下，整个接种时间应尽早可能短，一般不应超过30min。如接种动 物数较多，可制成细胞悬液进行接种，以上法切取生长良好的癌组织，剪成小块，用无菌玻璃研磨，磨匀后装人无菌容器 内，加生理盐水稀释l:3-l:4的瘤细胞，每个动物接种0.2ml。

6.移植性肿瘤模型的优点:
1).可以使一群动物同时带有相同的肿瘤。
2).肿瘤生长速率比较一致，个体差异较小。
3）.接种的成活率高，接近100％ ，对宿主的影响也类似，易于客观的判断疗效。
4）. 肿瘤形态、生长率、对药物的敏感性、动物的死亡时间等非常相近。

7.皮下移植性肿瘤的缺点：
1）.皮下移植肿瘤生长速度快，增殖比率高，体积倍增时间短，是与人体肿瘤的显著不同
2）. 生物学行为往往仅有肿瘤的局限性生长和浸润，难以观察到重要的淋巴和血道转移行为，与自然状态肿瘤相关性不 高，不能很好地模拟肿瘤在人体内的自然生长过程，对于研究其病理生理过程存在较大的局限性，仅适合用作评价药物疗效 的初步筛选模型。

8.原位移植肿瘤模型： 指将肿瘤细胞或肿瘤组织块原位移植到免疫缺陷动物的组织器官内，使之产生肿瘤并形成自发性转移灶。此种模型是目 前较为理想的动物模型，为肿瘤的生长提供了最适宜的环境，能较好的模拟人体内肿瘤的发生、发展、侵袭及转移的全过 程。

9.原位移植肿瘤模型的制作：
1）.肿瘤的来源：人的胸腹水，手术切除的肿瘤，小鼠自发或诱发的肿瘤，或者已经建系的肿瘤细胞株。 2）.方法：将稀释好的肿瘤细胞50-100ul约2×108/ml直接接种到器官的浆膜下。或者先将肿瘤细胞皮下接种，达1 cm 左 右，瘤组织取出切成1-3mm 的小块。将准备好的癌组织块植入器官的浆膜下，缝合浆膜。

10.同位移植瘤动物模型的优点：
可以模拟出同原发肿瘤发病部位相似的肿瘤微环境，同时也能够在相应的部位形成转移灶，可以避免由于移植位点特异 性所引起的假阳性结果．并且可以对临床上的一些情况进行模拟，如应用在转移癌的研究来模拟那些临床上已经切除了原发 肿瘤而又发生了转移的患者。同位裸鼠移植瘤动物模型成为我们研究治疗方案，阐明与浸润、转移和肿瘤治疗相关的分子生 物学机制提供了重要而有效的手段。

11.原位移植瘤模型的应用：
1）为弥补异位移植方法的不足，避免假阳性结果的产生。对于所有实验性治疗方法来讲，最终都要应用原位移植瘤动 物模型来更深一步研究其抗肿瘤谱及其分子生物学机制。
2）对于细胞毒类药物，那些对肿瘤微环境起调控作用的抗肿瘤药物只可以在原位移植瘤动物模型上进行研究。如可以 调节肿瘤细胞产物的化疗药物和可以调控机体局部组织反应的药物。
3）如果想观察药物对转移性肿瘤的作用，最好应用原位裸鼠移植瘤动物模型进行研究。

需确认的信息
1. 模型种属（大鼠还是小鼠或是其他种属）
2. 动物体重有无要求，年龄有无要求
3. 雌雄有无要求
4. 模型构建具体方案
5. 取材要求（采血、取组织样本）