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100
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/
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3个月
- 供应商:
上海烜雅生物科技有限公司
- 保存条件:
详见说明书
- 规格:
50管/24样
试剂盒说明书
分光光度法50管/24样
注 意 :正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定
测定意义:
蔗糖转化酶(Invertase,Ivr)催化蔗糖不可逆地分解为果糖和葡萄糖,是高等植物蔗糖代谢关键酶之一。根据最适 pH,Ivr分为酸性转化酶(AI)和中性转化酶(NI)两种类型。
AI的最适pH为3~5。AI分为可溶性AI(S-AI)和细胞壁不溶性AI(B-AI)两种类型。B-AI存在于细胞间隙并结合在细胞壁上,主要参与韧皮部质外体卸载时蔗糖的分解,以维持库源之间蔗糖的浓度。
测定原理:
B-AI催化蔗糖降解产生还原糖,进一步与3,5-二硝基水杨酸反应,生成棕红色氨基化合物,在510nm有特征光吸收,在一定范围内510nm光吸收增加速率与B-AI活性成正比。
自备用品:
可见分光光度计、台式离心机、水浴锅、移液器、1mL玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
试剂组成和配制:
提取液1:液体50mL×1瓶,4℃保存;
提取液2:液体50mL×1瓶,4℃保存;
试剂一:液体50mL×1瓶,4℃保存;
试剂二:粉剂×1瓶,4℃保存;临用前加入25mL试剂一充分溶解备用;用不完的试剂4℃保存;
试剂三:液体30mL×1瓶,4℃保存;
粗酶液提取:
按照组织质量(g):提取液1体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL提取液1),进行冰浴匀浆。12000g 4℃离心10min,弃上清,沉淀中加入1mL蒸馏水,充分震荡混匀,12000g 4℃离心10min,弃上清,沉淀中加入1mL提取液2 充分混匀,4℃浸提过夜,12000g 4℃离心20min,取上清置冰上待测。
测定步骤和加样表:
| 试剂名称(μL) | 测定管 | 对照管 |
| 样本 | 200 | 200 |
| 试剂一 | 800 | |
| 试剂二 | 800 |
浓度不变)
| 试剂三 | 500 | 500 |
B-AI活性计算:
标准条件下测定的回归方程为y = 0.0016x -0.001;x为标准品浓度(μg/mL),y为吸光值。
(1)按蛋白浓度计算:
单位的定义:37℃每mg蛋白每分钟产生1μg还原糖定义为一个酶活性单位。
B-AI活性(μg/min/mg prot)=[(ΔA +0.001) ÷0.0016×V1]÷(V1×Cpr ) ÷T=20.8×(ΔA +0.001) ÷Cpr
(2)按鲜重计算:
单位的定义:37℃每g组织每分钟产生1μg还原糖定义为一个酶活性单位。
B-AI活性(μg/min/g鲜重)=[(ΔA +0.001) ÷0.0016×V1]÷(W ×V1÷V2) ÷T =20.8×(ΔA +0.001) ÷W
V1:加入反应体系中样本体积,0.2mL;V2:加入提取液体积,1mL;T:反应时间,30min; Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本鲜重,g
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文献和实验%)仍具有很高的应用价值。 RNA 提制过程首先要使RNA 从细胞中释放,并使它和蛋白质分离,然后将菌体除去。再根据核酸在等电点时溶解度最小的性质,将pH 调至2.0~2.5,使RNA 沉淀,进行离心收集。然后运用RNA 不溶于有机溶剂乙醇的特性,以乙醇洗涤RNA 沉淀。提取RNA 的方法很多,在工业生产上常用的是稀碱法和浓盐法。稀碱法利用细胞壁在稀碱条件下溶解,使RNA 释放出来,这种方法提取时间短,但RNA 在稀碱条件下不稳定,容易被碱分解;浓盐法是在加热的条件下,利用高浓度的盐
sec ,弃尽上清。 (2)破壁和匀浆 用户可选择酶法或碾磨法破坏细胞壁。酶法是用Lyticase 消化细胞壁,将酵母菌制成原生质体。 碾磨法是用机械力破坏细胞壁。两种方法在RNA 的纯度和得率上无任何差别。 A.酶法 (a)用1ml 已加入70U Lyticase 的酵母菌原生质体制备缓冲液悬浮酵母菌沉淀,30℃温育10~30min。 (b)4℃,3000×g 离心5min,弃尽上清。 (c)加0.45ml 4℃预冷的Buffer R-A,立即用带4~6号针头的1ml 注射器反复吸注
化合物的有效结合剂。在提取线粒体时加入可溶性PVP,提取可溶性酶时加入不溶性交联PVP(Polyvinyl polypyrrolidone,简称PVPP,或PolyclarAT),能有效地降低提取液中酚的含量。PVPP含有微量金属元素及PVP单体,可加10%HCl煮沸10分钟,用NaOH中和,再用水洗几次,直至中性,纯化后的PVPP不必干燥就可直接应用。 植物细胞有坚韧的细胞壁,需要强烈的方法去破碎,少量样品可用研钵加石英砂研磨,或用玻璃匀浆器。大量样品则需用电动匀浆器。为减低研磨或匀浆过程中










