超氧化物歧化酶(SOD)试剂盒-WST-8法
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超氧化物歧化酶(SOD)试剂盒-WST-8法

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  • ¥430 - 820
  • WKSUBIO
  • WS1010F
  • 国内
  • 2025年12月08日
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    • 英文名

      Superoxide Dismutase (SOD) assay kit

    • 保质期

      3个月

    • 供应商

      瓦兰生物

    • 保存条件

      4℃

    • 规格

      48T/96T

    规格:48T产品价格:¥430.0
    规格:96T产品价格:¥820.0
    本试剂盒仅供科研使用
    1
    超氧化物歧化酶(SOD)—WST-8 法活性测定试剂盒说明书
    (货号:WS1010F-1 分光法 48 样)
    一、产品简介:
    超氧化物歧化酶(SOD)(EC 1.15.1.1)在动植物、微生物和培养细胞体内广泛存在,
    其具有抗衰老、提高机体对多种疾病的抵抗力,能增强机体对外界环境的适应力,是生
    物体内一种重要的抗氧化酶。
    目前有多种 SOD 活性测定法,其中 NBT(氮蓝四唑)法产生的甲臜染料水溶性差,易和
    被还原的黄嘌呤氧化酶相互作用,抑制百分率达不到 100%等,从而使检测的灵敏度和
    精确度受到影响;本试剂盒采用的是目前稳定性更好、灵敏度更高的 WST-8 法,WST-8
    可以和黄嘌呤氧化酶(Xanthine Oxidase, XO)催化产生的超氧化物阴离子(O
    2 .-
    )反应产生
    水溶性的甲臜染料,后者在 450nm 处有最大吸收;SOD 可清除 O
    2 .-.
    ,从而抑制甲臜的形
    成;反应液颜色越深,说明 SOD 活性愈低,反之活性越高。
    二、试剂盒组分与配制:
    试剂名称
    规格
    保存要求
    备注
    提取液
    液体 60mL×1 瓶
    4℃保存
    试剂一
    液体 16mL×1 瓶
    4℃保存
    试剂二
    液体μL×3 支
    4℃保存
    临用前离心或甩几下使试剂落入底部,每支
    分别加 1.1 mL 蒸馏水充分溶解,-20℃保存。
    试剂三
    液体 1.5mL×1 支
    4℃保存
    试剂四
    粉剂×5 支
    4℃保存
    临用前甩几下,使粉剂落到底部,每支加
    0.1mL 试剂五振荡或超声溶解后,再加
    3.9mL 蒸馏水混匀使用(务必加 0.1mL 试剂
    五溶解后再加水),一周内用完。
    试剂五
    液体 1mL×1 支
    4℃保存
    三、所需的仪器和用品:
    可见分光光度计、1mL 玻璃比色皿(光径 1cm)、低温离心机、可调式移液器、研钵。
    四、超氧化物歧化酶(SOD)的测定:
    建议正式实验前选取 2 个样本做预测定,了解本批样品情况,熟悉实验流程,避免实验
    样本和试剂浪费!
    1、样本制备:
    ① 组织样本:取约 0.1g 组织(水分充足的样本可取 0.25g),加入 1mL 提取液,在 4ºC
    或冰浴进行匀浆(或用各类常见匀浆器)。4ºC×12000rpm 离心 10min,取上清作为待测液。
    【注】:若增加样本量,可按照组织质量(g):提取液体积(mL)为 1:5~10 的比例进行提取
    ② 细菌/细胞样本:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;取约 500 万细菌或细
    胞加入 1mL 提取液,超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率 200W,超声 3s,间隔 10s,
    重复 30 次);12000rpm 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
    【注】:若增加样本量,可按照细菌/细胞数量(104):提取液(mL)为 500~1000:1 的比例进行提取。
    ③ 液体样本:直接检测;若浑浊,离心后取上清检测。
    2、上机检测:
    ① 可见分光光度计预热 30min 以上,调节波长至 450nm,蒸馏水调零。
    ② 测定前将试剂一、三和四 25℃水浴 5min 以上。本试剂盒仅供科研使用
    2
    ③ 试剂四每次加样前务必混匀,保证试剂的均一性。
    ④ 在 1mL 玻璃比色皿(光径 1cm)中依次加入:
    试剂名称(μL) 样本管
    样本对照管*
    (可选做)
    空白管 1
    (仅做一次)
    空白管 2
    (仅做一次)
    试剂一
    280
    280
    280
    280
    试剂二
    60
    60
    蒸馏水
    60
    60
    120
    样本
    60
    60
    试剂三
    30
    30
    30
    30
    试剂四
    320
    320
    320
    320
    充分混匀,室温(25℃)避光静置 30min(准确时间)后,于 450nm
    测定各管吸光值 A。
    【注】: 1、若样本量较多,测定前可将试剂一、三和四按照 280μL:30μL:320μL 比例混成一个混合液(需
    依据当次检测的样本数量混合对应的试剂量),每管务必最后一步加 630μL 该混合液。
    2、样本对照管*:提取后样本颜色较深:如棕褐色或黄色,或 A 对照管值>0.1,可做此管,否则
    抑制率偏低,即 SOD 活性偏低。若为相同样本可做一组样本对照管,若每个样本都做对照
    管则该试剂盒由原来可测 48 样变为 24 样。
    3、若样本管数值过低,可能是:①试剂二或试剂四没有现配现用;②没有按顺序加试剂;③反应
    温度需室温(25℃)。
    五、结果计算:
    1、抑制百分率的计算:
    抑制百分率=[(A
    空白管 1
    -A
    空白管 2
    )-(A
    样本管
    -A
    样本对照管*
    )]/(A
    空白管 1
    -A
    空白管 2
    )×100%
    若没有做 A
    样本对照管
    则值为 0 代入公式计算抑制百分率;控制样本的抑制百分率在 30-80%
    范围内。1:若抑制百分率小于 30%,则需重新准备浓度比较高的待测样本;2:若大
    于 80%,则需将样本粗提液用蒸馏水或提取液适当稀释。
    2、SOD 酶活性计算:
    SOD 酶活单位:在上述黄嘌呤氧化酶藕联反应体系中抑制百分率为 50%时,反应体系中
    的 SOD 酶活力定义为一个酶活力单位(U/mL)。
    a.按样本鲜重计算:
    SOD 活性(U/g 鲜重)=[抑制百分率÷(1-抑制百分率)×V2]÷(W×V1÷V)×D
    =12.5×抑制百分率÷(1-抑制百分率)÷W×D
    b.按样本蛋白浓度计算:
    SOD 活性(U/mg prot)=[抑制百分率÷(1-抑制百分率)×V2]÷(V1×Cpr)×D
    =12.5×抑制百分率÷(1-抑制百分率)÷Cpr×D
    c.按细胞数量计算:
    SOD 活力(U/104 cell)=[抑制百分率÷(1-抑制百分率) ×V2]÷(500×V1÷V)×D
    =0.025×抑制百分率÷(1-抑制百分率)×D
    d.按液体体积计算:
    SOD 活性(U/mL)=[抑制百分率÷(1-抑制百分率)×V2]÷V1×D
    =12.5×抑制百分率÷(1-抑制百分率)×D
    V---加入提取液体积,1 mL;
    V1---加入反应体系中样本体积,0.06mL;
    V2---反应体系总体积,0.75mL;
    D---样本稀释倍数,未稀释即为 1;
    W---样本质量,g;
    500--细胞数量,万;
    Cpr---样本蛋白质浓度,mg/mL ;建议使用本公司 BCA 蛋白质含量测定试剂盒。

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