SPL-36006Insert共培养板挂壁式，6小室/6孔板

TIL （肿瘤浸润淋巴细胞）细胞的培养

，移至无菌平皿内用手术剪将肿瘤组织剪碎至1－2mm3 小块，置于3600u DNA 酶、50μg 胶原酶和125u 透明质酸酶的RPMI1640 培养液40ml 中，混匀并移至带有磁棒的无菌三角烧瓶内，于37℃恒温的磁力搅拌器上搅拌1－2 小时。 2.用200 目孔径的不锈钢滤网将酶消化后的细胞悬液过滤，以除去未消化好的肿瘤组织块。经1500r/min 收集单个细胞，用RPMI1640 或X－VIVO15 培养液洗细胞2 次，将细胞再悬浮。 3.梯度离心分离TIL 细胞：于无菌离心管内分层放入

显微镜基础知识（二）

，从而影响成像质量。球差的矫正常利用透镜组合来消除，由于凸、凹透镜的球差是相反的，可选配不同材料的凸凹透镜胶合起来给予消除。旧型号显微镜，物镜的球差没有完全矫正，应与相应的补偿目镜配合，才能达到纠正效果。一般新型显微镜的球差完全由物镜消除。3、慧差（Coma）慧差属轴外点的单色相差。轴外物点以大孔径光束成象时，发出的光束通过透镜后，不再相交一点，则一光点的象便会得到一逗点壮，型如慧星，故称“慧差”。4、象散（Astigmatism）象散也是影响清晰度的轴外点单色相差。当视场很大时，边缘上的物点离光轴远

各类细胞培养小结

一次，使细胞分离。 5、加入3-5ml含血清的培养液以终止胰酶消化作用。 6、用100目孔径滤网滤过，除去未消化的大组织块。 7、1000rpm，离心5分钟，弃上清液。 8、加入无血清培养液5ml，冲散细胞，再离心一次，弃上清液。 9、加入含血清的培养液l-2 ml（视细胞量），血球计数板计数。 10、将细胞调整到5×105/ml左右，转移至6孔培养板中，37℃下培养。 大鼠胰岛细胞原代培养 一周龄Wistar大鼠，断颈处死，于75%乙醇浸泡15分钟，无菌取出胰脏，于冰冷无菌