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10^6
- 供应商:
澳音生物
- 肿瘤类型:
/
- 细胞类型:
人SV40转染成骨细胞
- ATCC Number:
/
- 品系:
人SV40转染成骨细胞
- 组织来源:
人SV40转染成骨细胞
- 相关疾病:
人SV40转染成骨细胞
- 物种来源:
人SV40转染成骨细胞
- 免疫类型:
人SV40转染成骨细胞
- 细胞形态:
人SV40转染成骨细胞
- 是否是肿瘤细胞:
是
- 器官来源:
人SV40转染成骨细胞
- 运输方式:
复苏发货/干冰运输
- 年限:
无限
- 生长状态:
贴壁
- 英文名:
hFOB 1.19
- 规格:
T25/冻存管
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文献和实验/ml,确保转染时细胞没有长满或处于静止期。因为转染效率对细胞密度很敏感,所以在不同实验间保持一个基本的传代步骤很重要。铺板细胞数目的增加可以增加转染活性和细胞产量。细胞的融合度必须要达到90%才能做。 05启动子的选择 获得高转染活性所需选择的启动子依赖于选用的细胞系和要表达的蛋白。CMV启动子在大多数细胞类型中可以获得高表达活性。同其他启动子,如SV40和RSV(劳斯肉瘤病毒)相比,在BHK-21中其活性最高。这三种病毒启动子在T细胞来源的细胞系,如Jurkat中组成表达水平较低。转染
摩尔)的对照报告基因酶(图3B),并且这两个酶的特异活力相似。 图2 用双荧光素酶报告基因测试由萤火虫和Renilla荧光素酶产生的发光。CHO细胞(1×106 /60mm培养板)共转染pGL3Control和pRL SV40载体DNA.细胞用PBS洗涤后,加入400μl PLB制成裂解液。将20μl小量细胞裂解液和100μl荧光素酶测试试剂II(LARII)混合,萤火虫荧光素酶的活力立即用荧光照度仪检测(细线示踪)。100μl Stop &GloTM 试剂加入到荧光照度仪管中,湮灭萤火
【求助】研究一个基因的5‘非翻译区是否含有低氧转录因子的结合位点,请指教
luoqq1985 这里做基因调控区的前辈一定不少,希望能给点意见,我在研究一个基因的5‘非翻译区是否含有低氧转录因子的结合位点,前期的工作是通过软件分析该区域是否存在这个结合位点的疑似序列,然后将这疑似的序列构人到PGL-3sv40中,转染细胞,经过低氧处理(低氧转录因子会增加)检测双萤光素酶的表达变化。如果有,还可以通过突变碱基进一步确定,但是如果不存在这样的结合位点,那我构出来的这个调控区质粒,不知道还可以做点别的什么试验?
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