无内毒素高纯度质粒大量快速提取试剂盒

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产品描述：

产品名称：无内毒素高纯度质粒大量快速提取试剂盒

描述: 本试剂盒采用改进SDS-碱裂解法裂解细胞，粗提物通过过滤柱除去内毒素，然后离心吸附柱内的硅基质膜在高盐、低pH值状态下选择性地结合溶液中的质粒DNA，再通过去蛋白液和漂洗液将杂质和其它细菌成分去除，最后低盐、高pH值的洗脱缓冲液将纯净质粒DNA从硅基质膜上洗脱。

产品特点：
1、不需要使用有毒的苯酚、氯仿等试剂，也不需要乙醇沉淀。从100~200ml大肠杆菌LB培养液中，可快速提取0.2~1.5mg纯净的高拷贝质粒，提取率达80~90%。
推荐每次菌液使用量：高拷贝质粒推荐使用量为100 ml，得率一般在500-1500 μg左右；低拷贝质粒推荐使用量为200 ml，得率一般在200-600 μg左右。
2、获得的质粒产量高，超螺旋比例高，纯度好，可直接用于酶切、转化、PCR、体外转录、测序、转染等各种分子生物学实验。

产品信息：

使用方法: 使用前请先在漂洗液 WB 中加入无水乙醇。
1、柱平衡步骤：向吸附柱 CP6 中（吸附柱放入 50ml 收集管中）加入 2.5 ml 的平衡液 BL，8,000 rpm (~8,228×g)离心 2 min，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收 集管中。（用平衡液处理过的柱子最好立即使用）。
2、取 100ml（根据培养菌体的浓度选择合适的量，低拷贝推荐用 200 ml）过夜培养的菌 液加入离心管，室温 8,000 rpm (~8,228×g)离心 3 min 收集细菌，尽量吸除上清。注意：菌液较多时可以通过几次离心将菌体沉淀收集到一个离心管中, 菌液量以能够 充分 裂解为佳，菌液过多会导致裂解不充分从而降低质粒的提取效率。
3、尽量吸除上清，为确保上清液全部吸取，请用干净的吸水纸吸去瓶壁上的水滴。
4、向留有菌体沉淀的离心管中加入 8 ml 溶液 P1（请先检查是否已加入 RNase A），使 用移液器或涡旋振荡器彻底悬浮细菌细胞沉淀。注意：请务必彻底悬浮细菌沉淀，如果有未彻底混匀的菌块，会影响裂解效果，导致 提取量和纯度偏低。对于低拷贝质粒，加大菌体用量的同时按比例增加 P1、P2 和 P4 的用量。
5、向离心管中加入 8ml 溶液 P2，立即温和地上下翻转 6-8 次，使菌体充分裂解，室温 放置 5 min。 注意：温和地混匀，不要剧烈震荡，以免污染基因组 DNA。此时菌液应变得清亮粘稠， 如果未变得清亮，可能由于菌体过多，裂解不彻底，应减少菌体量。
6、向离心管中加入 8 ml 溶液 P4，立即温和地上下翻转 6-8 次，充分混匀，至溶液出现白色分散絮状沉淀。然后室温放置 10 min 左右。8,000 rpm (~8,228×g)离心 5-10 min， 使白色沉淀离至管底（可适当增加离心时间），将全部溶液小心倒入过滤器 CS1中 （请避免倒入大量沉淀而阻塞过滤器），慢慢推动推柄过滤，滤液收集在干净的 50 ml 的管中（自备）。注意：加入溶液 P4 后应立即混匀，避免产生局部沉淀。如果离心后倒入过滤器 CS1 中的溶液有白色沉淀也不会影响过滤。如果菌体过多（>100 ml），推荐延长离心时间 至 20-30 min。
7、向滤液中加入 0.3 倍滤液体积的异丙醇（加入异丙醇过多容易导致 RNA 污染），上下 颠倒 混匀后转移到吸附柱 CP6 中（吸附柱放入 50 ml 收集管中）。 注意：过滤后滤液会损失，根据损失的不同请加入不同体积的异丙醇。吸附柱 CP6 的 最大容积为 15 ml，所以需要分两次过柱。个别情况下离心机转子倾角较大，此时，建 议加入吸附柱 CP6 的溶液体积不超过 10 ml，以防产生漏液现象。
8、室温 8,000 rpm (~8,228×g)离心 2 min，倒掉收集管中的废液，将吸附柱 CP6 重新放回 收集管中。注意：将第 7 步中所得溶液分两次过柱，每次均按以上条件操作。
9、向吸附柱 CP6 中加入 10 ml 漂洗液 WB （请先检查是否已加入无水乙醇），8,000 rpm (~8,228×g)离心 2 min，弃掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
10、重复操作步骤 9。
11、向吸附柱 CP6 中加入 3 ml 无水乙醇，室温 8,000 rpm (~8,228×g)离心 2 min，倒掉废液。
12、将吸附柱 CP6 重新放回收集管中，8,000 rpm (~8,228×g)离心 5 min，目的是将吸附 柱中残余的漂洗液去除。 注意：漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶促反应（酶切、PCR 等）实验。为确保下游实验不受残留乙醇的影响，建议将吸附柱 CP6 开盖，置于室温放置数分钟，以彻 底晾干吸附材料中残余的漂洗液。
13、将吸附柱CP6置于一个干净的50 ml收集管中，向吸附膜的中间部位悬空滴加1-2 ml 洗脱缓冲液 EB，室温放置 5 min，然后室温 8,000 rpm (~8,228×g)离心 2 min。将 50 ml 离心管中的洗脱液全部移入一个干净的 1.5 ml 离心管，-20℃保存。注意：为了增加质粒的回收效率，可将得到的溶液重新加入到吸附柱中，重复步骤 13。 洗脱液的 pH 值对于洗脱效率有很大影响。若用 ddH2O 做洗脱液应保证其 pH 值在 7.5-8.0 范围内，pH 值低于 7.0 会降低洗脱效率。洗脱缓冲液用量的多少主要是依据质 粒的拷贝数 以及实验所需要的浓度来确定。洗脱缓冲液体积不少于 1 ml，体积过小影响回收效率。 DNA 产物应保存在-20℃，以防 DNA 降解。可选步骤（如果需要更高浓度的质粒，可进行如下操作）：
14、每 1 ml 洗脱液加入 1.42 ml 异丙醇以及 0.42 ml 5M NaCl (客户自备)，混匀, 室温放 置 5 min，8,000 rpm (~8,228×g)离心 10 min，小心弃上清。
15、加入 0.5 ml 的 70%乙醇洗涤沉淀, 室温 8,000 rpm (~8,228×g)离心 5 min，小心弃乙醇。
16、重复操作步骤 15。
17、空气中干燥 DNA 沉淀 5-10 min, 根据需要用适当体积的 EB 缓冲液溶解沉淀。

储存/保存方法: 参考试剂盒说明书，有效期18个月。

注意事项:
1、溶液 P1 在使用前先加入 RNase A（将试剂盒中提供的 RNase A 全部加入），混匀，置于 2-8℃保存。
2、使用前先检查平衡液 BL、溶液 P2 和 P4 是否出现结晶或者沉淀，如有结晶或者沉 淀现象，可在 37℃水浴中加热几分钟，即可恢复澄清。
3、注意不要直接接触溶液 P2 和 P4，使用后应立即盖紧盖子。
4、使用过滤器时请将推柄小心缓慢地从过滤管中抽出，避免滤膜因压力而松动。
5、提取的质粒量与细菌培养浓度、质粒拷贝数等因素有关。如果所提质粒为低拷贝质 粒或大于 10 kb 的大质粒，应加大菌体使用量，同时按比例增加 P1、P2、P4 的用量；洗脱缓冲液推荐在 65-70℃水浴中预热。可以适当延长吸附和洗脱时间，以提高提取效率。
6、实验前使用平衡液 BL 处理吸附柱，可以最大限度激活硅基质膜，提高得率。
7、用平衡液处理过的柱子最好立即使用，放置时间过长会影响使用效果

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