快速多片段DNA组装预混液

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  • abs60250
  • 上海
  • 2025年07月12日
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      -20℃保存,有效期24个月。

    • 保质期

      24个月

    • 英文名

      LightNing DNA Assembly Mix Plus

    • 库存

      现货

    • 供应商

      爱必信(上海)生物科技有限公司

    • CAS号

      -

    • 规格

      50rxns

    公告提醒:爱必信所有产品和服务仅用于科学研究不用于临床应用及其他用途提供产品和服务也不为任何个人提供产品和服务)!

     

    产品描述:

    产品名称:快速多片段DNA组装预混液

    描述:         基于重组原理的无缝克隆技术,作为新一代的克隆方法,不依赖繁琐的酶切、连接步骤,也不需要末端补平等操作,依据 DNA 片段与线性化载体末端的 15~25 nt 同源序列的重组,可将插入片段克隆至任意线性载体的任意位点,载体自连背景极低,是一种简单、快速、高效的 DNA 定向克隆技术。
            LightNing DNA Assembly Mix Plus 无缝克隆试剂盒,一次反应可完成单至多个 DNA 片段的重组,最快仅需 5 分钟即可完成单片段重组,且阳性率高于 95%。Mix 中添加的辅助因子,有效提高克隆阳性率;经优化的反应体系,能够一定程度上耐受未纯化 PCR 产物中含有的杂质。升级版的无缝克隆试剂盒具有更高的阳性率、更好的兼容性。
    产品组成

    组分 规格
    LightNing  DNA Assembly Mix Plus 250 μl
    pUC19 Control Plasmid,Linearized (Ampr, 40 ng/μl) 5 μl
    500 bp Control Fragment (20 ng/μl) 5 μl

    浓度: 2 ×

    使用方法: 实验步骤
    1、实验流程概要
    快速多片段DNA组装预混液
    2、线性化克隆载体制备
    选择合适的克隆位点,对载体进行线性化,载体的线性化可以通过酶切或反向 PCR 扩增完成。
    ① 酶切制备
    推荐使用 LightNing 快速内切酶进行双酶切,使载体线性化完全,以降低转化背景 ( 假阳性克隆 );若使用单酶切进行线性化,可以适当延长酶切时间以减少环状质粒残留。
    注 1:经双酶切进行线性化的载体无需去磷酸化,经单酶切则需要去磷酸化;
    注 2:酶切完成后,应将快速内切酶失活或对目的产物纯化后再用于重组反应。
    ② 反向 PCR 扩增制备
    为减少扩增突变的引入,推荐使用高保真 PCR Mix 进行扩增。推荐使用预线性化质粒作为模板,以减少环状质粒模板残留对克隆阳性率的影响。
    3、插入片段 PCR 引物设计
    PCR 引物的 5' 端必须包含与其相邻片段(插入片段或载体)末端同源的 15~25 nt(推荐 18 nt)序列。假如载体为粘性末端,且 3' 端突出,则引物设计必须包含突出部分;若 5' 端突出,则引物设计可以包含突出部分,也可以不包含。
    插入片段正向扩增引物:
    5'—上游载体末端同源序列 + 酶切位点(可选)+ 基因特异性正向扩增序列— 3'
    插入片段反向扩增引物:
    3'—基因特异性反向扩增序列 + 酶切位点(可选)+ 下游载体末端同源序列—5'
    注 1:尽量选择无重复序列且 GC 含量均匀的区域进行克隆,当载体克隆位点上下游25 nt 区域内 GC 含量为 40%~60% 时,重组效率最高;
    快速多片段DNA组装预混液
    注 2:本试剂盒所提供的 pUC 19 载体(Ampr)连接端序列如下: 
    快速多片段DNA组装预混液
    4、插入片段的 PCR 扩增
    推荐使用高保真 PCR Mix 进行扩增,以减少扩增突变的引入。建议使用纯化后的 PCR 产物进行无缝克隆反应,若 PCR 产物经琼脂糖凝胶电泳鉴定为特异性扩增产物,可直接使用,但加样体积不应超过总反应体积的 20%。

    5、重组反应
    ①于冰水浴中配置以下反应体系:

    组分 反应体系 阴性对照 阳性对照(如有必要)
    LightNing  DNA Assembly Mix Plus 5μl 5μl 5μl
    线性化载体a 50~200ng 50~100ng pUC19 Control Plasmid,
    Linearized, 1 μl
    插入片段b 10~200ng - 500 bp Control,
    Fragment, 1 μl
    ddH2O To 10μl

    a. 最适载体用量(ng) = 0.02 × 载体碱基对数,即0.03 pmol。
    b. 插入单片段,最适片段用量(ng)= 0.04 × 片段碱基对数;插入多片段,每片段最适用量(ng)= 0.02 × 片段碱基对数。
    注1:若插入单片段的长度大于载体,则应互换载体与插入片段用量;
    注2:若插入片段的长度小于200 bp,则插入片段应使用5 倍载体用量;
    注3:若按上述公式计算得到的用量超过最低/ 最高值,则建议直接按最低/ 最高用量使用;
    注4:载体片段过长、插入片段过长或片段数过多,克隆阳性率均会降低。
    重组反应体系配制完成后,用移液枪轻轻吸打混匀各组分,避免产生气泡,切勿涡旋。

    ② 将反应体系置于50℃,反应5~60 min。
    注1:推荐使用 PCR 仪等温控比较精准的仪器进行反应,反应时间不足或太长克隆效率均会降低;
    注2:插入1~2 个片段时,推荐反应时间为5~15 min;插入3~5 个片段时,推荐反应时间为15~30 min;
    注3:当载体骨架在10 kb 以上或插入片段在4 kb 以上时,建议延长反应时间到30~60 min;
    注4:50℃反应完成后,建议进行瞬时离心,将反应液收集至管底。
    ③ 将反应液离心管置于冰上冷却,之后进行转化或者储存于 -20℃。
    注 1: -20℃储存的重组产物,建议在 1 周内使用。

    6. 重组产物转化
    取5~10 μl 反应液,加入到100 μl 感受态细胞中,缓慢吸打混匀,冰上放置30 min。42℃ 热激45~60 sec,冰浴5 min。加500 μl SOC或 LB 培养基,37℃ 振荡培养40~60 min(200 rpm)。将菌液均匀涂布在含有对应抗生素的平板上,倒置于37℃ 过夜培养。
    注1:不同感受态细胞最后的克隆阳性率会有所差别,推荐使用转化效率 > 108 CFU/μg的感受态细胞;
    注2:菌落数取决于PCR 产物与线性化载体的数量和纯度;
    注3:阳性对照平板通常生长大量白色单菌落,阴性对照平板只生长很少的菌落。

    7. 阳性克隆检测
    挑取单菌落至10 μl ddH2O 中混匀,95℃裂解10 min 后,取1 μl裂解液作为模板,进行菌落PCR 鉴定,或将单菌落接种至抗性培养基中培养过夜后,提取质粒进行酶切鉴定。阳性对照的阳性克隆检测,菌落PCR 引物使用通用引物M13F 与M13R,酶切鉴定用HindIII 与EcoRI。
    注1:菌落PCR 时建议至少使用一条通用引物,避免假阳性结果;
    注2:必要时可进一步对阳性结果进行测序鉴定。
    注3:M13F:TGTAAAACGACGGCCAGT
             M13R:CAGGAAACAGCTATGAC

    储存/保存方法: -20℃保存,有效期24个月。

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