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- 国产/进口
- FY-22FN1028
- 2025年12月21日
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- 详细信息
- 询价记录
- 文献和实验
- 技术资料
- 英文名：
HSC（Human Schwann）
- 库存：
现货库存
- 供应商：
上海富雨生物
- 肿瘤类型：
.
- 细胞类型：
HSC（Human Schwann）人雪旺细胞
- 品系：
HSC（Human Schwann）人雪旺细胞
- 组织来源：
雪旺细胞
- 相关疾病：
HSC（Human Schwann）人雪旺细胞
- 物种来源：
人
- 免疫类型：
HSC（Human Schwann）人雪旺细胞
- 细胞形态：
HSC（Human Schwann）人雪旺细胞
- 是否是肿瘤细胞：
.
- 器官来源：
雪旺细胞
- 运输方式：
复苏细胞常温运输/冻存细胞干冰运输
- 年限：
三代内
- 生长状态：
贴壁
- 规格：
1×106cells/T25培养瓶
| 细胞传代步骤： | 如果细胞密度达80%-90%，即可进行传代培养。1. 弃去培养上清，用不含钙、镁离子的PBS润洗细胞1-2次。2. 加2ml消化液（0.25%Trypsin-0.53mM EDTA）于培养瓶中，置于37℃培养箱中消化1-2分钟，然后在显微镜下观察细胞消化情况，若细胞大部分变圆并脱落，迅速拿回操作台，轻敲几下培养瓶后加少量培养基终止消化。3. 按6-8ml/瓶补加培养基，轻轻打匀后吸出，在1000RPM条件下离心4分钟，弃去上清液，补加1-2mL培养液后吹匀。4. 将细胞悬液按1：2到1：5的比例分到新的含8ml培养基的新皿中或者瓶中。 |
| 细胞复苏步骤： | 将含有1mL细胞悬液的冻存管在37℃水浴中迅速摇晃解冻，加入4mL培养基混合均匀。在1000RPM条件下离心4分钟，弃去上清液，补加1-2mL培养基后吹匀。然后将所有细胞悬液加入培养瓶中培养过夜（或将细胞悬液加入10cm皿中，加入约8ml培养基，培养过夜）。第二天换液并检查细胞密度。 |
| 细胞冻存步骤： | 待细胞生长状态良好时，可进行细胞冻存。下面T25瓶为例；1．细胞冻存时，弃去培养基后，PBS清洗瓶底1-2次后加入1ml胰酶，细胞变圆脱落后，加入2ml完全培养基终止消化，可使用血球计数板计数。 2．1000RPM离心5分钟去掉上清。用血清重悬浮，加DMSO至最终浓度为10%。加入DMSO后迅速混匀，按每1ml的数量分配到冻存管中，注意冻存管做好标识。本公司按每个冻存管细胞数目大于1X106个细胞冻存。3．将冻存管置于程序降温盒中，放入-80度冰箱，至少2个小时以后转入液氮灌储存。记录冻存管位置以便下次拿取。 |
| 细胞运输： | 干冰运输(2ml冻存管)或活细胞运输（T25细胞瓶） |
显微镜下部分细胞产品的形态： 
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- 作者
- 内容
- 询问日期
文献和实验Analysis of the effect of PECAM1 on the migration and invasion of gastrointesti- nal stromal tumor cells based on single－cell transcriptome sequencing data
期刊：MODERN ONCOLOGY，Aug．2023，VOL. 31，No. 16
作者：HU Wu1，WEN Yiqiao2，QIN Jialan1，ZHAO Ying3，ZHANG Tianbiao1
DOI：10．3969 /j．issn．1672－4992．2023．16．003
The method involved in the establishment of human adult Schwann cell cultures has steadily evolved over the last 20 yr. Unlike the more straightforward methods used with other species (e.g., rat), simple dissociation of human peripheral nerve
Isolation and Culture of Schwann Cells
Primarily cultured Schwann cells are essential for the investigation of molecular mechanisms regulating proliferation, survival, differentiation, and myelination of Schwann cell and for the development of efficient transplantation
The most widely used method (the Brockes’ method) for preparing primary Schwann cell culture uses neonatal rat sciatic nerves as the primary source of Schwann cells. The procedure is relatively simple and yields a highly purified population
