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鸭源性成分(Duck)核酸检测试剂盒(荧光-PCR 法)

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  • 2025年07月13日
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    • 英文名

      Diagnostic Kit for Duck derived ingredients DNA(Real-Time PCR Method)

    • 保质期

      1年

    • 供应商

      优利科(上海)生命科学有限公司

    • 保存条件

      -20℃

    • 规格

      50T

    鸭源性成分(Duck)核酸检测试剂盒(荧光-PCR 法)

    【产品名称】

    通用名称:鸭源性成分(Duck)核酸检测试剂盒(荧光-PCR 法)

    Name :Diagnostic Kit for Duck derived ingredients DNA(Real-Time PCR Method)
    【包装规格】50T/盒

    【预期用途】

    本试剂盒适用于动物组织以及食品、饲料等样本中鸭源性成分的检测。检测结   果仅供参考。

    【检验原理】

    本试剂盒用 SB/T 10923-2012 中的鸭源性成分特异性引物,结合一条特异性探针,用荧光 PCR 技术对核酸进行体外扩增检测,从而达到快速检测之目的。

    【试剂组成】

    名         称 规         格
    酶液 50μL×1 管
    Duck 反应液 500μL×2 管
    Duck 阳性质控品 50μL ×1 管
    阴性质控品 250μL ×1 管
    说明:不同批号的试剂盒组分不可交互使用。

    产品细节图片1

    【储存条件及有效期】

    -20℃±5℃,避光保存、运输、反复冻融不超过 5 次。有效期 12 个月。

    【适用仪器】

    ABI 、安捷伦 MX3000P/3005P、MJ Opticon2、LightCycler480、Bio-Rad、eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。

    【标本采集】

    取动物组织及其制品、食品或饲料约 1g。

    【保存和运输】

    上述标本短期内可保存于-20℃,长期保存可置-70℃。但不能超过 6 个月,标本运送应采用 0℃冰壶。

    【使用方法】

    1. 样品处理(样本处理区)
      1. 样本前处理:
    取动物组织及其制品、食品或饲料约 1g,手术剪剪碎混匀后取 0.5g 于研磨器
    中研磨,加入 1.5mL 生理盐水后继续研磨,待匀浆后转至 1.5mL 灭菌离心管中, 8000rpm 离心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 灭菌离心管中。
      1. DNA 提取
    样本 DNA 的提取推荐采用优利科(上海)生命科学有限公司生产的 DNA 提取试剂
    盒(离心柱提取法),请严格按照试剂盒说明书进行操作。
    1. 试剂配制(试剂准备区)
    根据待检测样本总数,设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性
    对照+1 管阳性对照;样品每满 7 份,多配制 1 份),每测试反应体系配制如下表:
    试剂 Duck 反应液 酶液
    用量 20μL 1μL
    1. 加样(样本处理区)
    将步骤 1 提取的 DNA、阳性质控品、阴性质控品各取 4μL,加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀,短暂离心。
    1. PCR 扩增(核酸扩增区)
      1. 将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内;
      2. 设置好通道、样品信息,反应体系设置为 25ul;荧光通道选择: 检测通道
    (Reporter Dye)FAM, 淬灭通道(Quencher Dye)NONE,请勿选择 ROX 参比荧光。
      1. 推荐循环参数设置:
    步骤 循环数 温度 时间 收集荧光信号
    1 1 cycle 95℃ 10min
    2 40 cycles 94℃ 15sec
    55℃ 30sec


    产品细节图片2
    1. 结果分析判定
      1. 结果分析条件设定
    设置 Baseline 和 Threshold:一般直接按机器自动分析的结果分析,当曲线出

    现整体倾斜时,根据分析后图像调节 Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范围内调节)、stop 值(一般可在 5~20 范围内调节),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖动阈值线至高于阴性对照),重新分析结果。
      1. 判断
    1. 检测通道 Ct 值≤30,有 FAM 荧光信号检出,并出现典型的扩增曲线,判断样品为阳性。
    2. 当 30<Ct 值≤35 时,且有典型的扩增曲线时,则需重复实验。再次扩增后检测体系的Ct 值仍≤35,且有典型的扩增曲线,则判定该样品含有相应的动物源性成分。当再次扩增后,检测体系 Ct 值>35,或无典型的扩增曲线,则判定该样品不含相应的动物源性成分。
    1. 质控标准
    1. 空白对照:无FAM 荧光信号检出或 Ct 值≥35,未出现典型的扩增曲线。
    2. 阴性对照:无FAM 荧光信号检出或 Ct 值≥35,未出现典型的扩增曲线。
    3. 阳性对照:有 FAM 荧光信号检出,并出现典型的扩增曲线,Ct 值<30。
    4. 以上应同时满足,否则本次实验无效。
     
    1. 检测方法的局限性
    • 样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关;
    • 样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果;
    • 阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果;
    • 病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果;
    • 不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果;
    • 试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果;
    • 本检测结果仅供参考,如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。
     

    【注意事项】

    • 所有操作严格按照说明书进行;检验过程中,参照《GB/T 27403 实验室质量控制规范 食品分子生物学检测》的规定进行。
    • 试剂盒内各种组分使用前应自然融化,混匀并短暂离心;
    • 反应液应避光保存;
    • 反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;
    • 使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;
    • 样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;
    • 实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;
    试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全   通则》进行处理。

    产品细节图片3

    产品细节图片4

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