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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 免疫原:
peptide
- 亚型:
IgG1
- 形态:
Liquid
- 克隆性:
Mouse monoclonal Antibody
- 标记物:
Non-conjugated
- 库存:
现货
- 供应商:
华安生物
- 宿主:
Mouse
- 应用范围:
WB, IP, ELISA
- 浓度:
2 mg/mL.
- 规格:
100μl/200μl/1ml
| 规格: | 100μl | 产品价格: | ¥900.0 |
|---|---|---|---|
| 规格: | 200μl | 产品价格: | ¥1575.0 |
| 规格: | 1ml | 产品价格: | ¥5250.0 |
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文献和实验。 2019 年 4 月 Thomas G Fazzio 教授等发表在 Cell 期刊的 uliCUT&RUN 技术,将蛋白质-DNA 互作研究升级到单细胞水平。近几个月来,又相继有文章报道了 CUT&Tag 等技术,进一步优化了蛋白质-DNA 互作研究方法,本文将对系列方法一并总结介绍。 1.蛋白质-DNA 互作新技术发展历程 1997 年 Orlando等研发出ChIP[1],主要用于研究转录因子与 DNA 结合位点的序列信息。 2009 年 Dominic Schmidt
45 s,30个循环;72 ℃延伸10 min。取10 μL PCR产物在20 g/L琼脂糖凝胶电泳检测。 1.7 多重PCR扩增 分别将上述1.5合成的FMDV,SVDV和VSV cDNA产物作为模板,在同一管内同时加入3对引物进行PCR扩增。反应条件及PCR反应参数如上1.6。PCR扩增结束后取10 μL扩增产物于20 g/L的琼脂糖凝胶(含0.5 μg/ mL溴化乙锭)中电泳检测。
干货 | CUT and Tag 核心酶 Hyperactive PA/PG-Tn5 Transposase 大解密
CUT&Tag(Cleavage Under Targets and Tagmentation)是蛋白-DNA 互作的一大革新技术,它不需要使用甲醛交联以及免疫共沉淀,而是通过针对靶蛋白(如转录因子、染色质重塑蛋白)的抗体和 Protein A/G 的介导,使得与 Protein A/G 融合的 Tn5 酶(Tagmentase)在切割 DNA 片段的同时在序列两端加上测序接头,经 PCR 扩增后即可形成用于高通量测序的文库(见图 1 )。CUT &Tag 技术具有细胞投入量低、信噪
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