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![4',4''',4'''''-(1,3,5-三嗪环-2,4,6-三基)三(([1,1'-联.苯]-4-胺)),4',4''',4'''''-(1,3,5-Triazine-2,4,6-triyl)tris(([1,1'-biphenyl]-4-amine)),98%,2130745-76-3](https://img1.dxycdn.com/2021/1125/266/3351412581036817153-14.jpg!wh200)
4',4''',4'''''-(1,3,5-三嗪环-2,4,6-三基)三(([1,1'-联.苯]-4-胺)),4',4''',4'''''-(1,3,5-Triazine-2,4,6-triyl)tris(([1,1'-biphenyl]-4-amine)),98%,2130745-76-3
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14-Bromo-3,6,9,12-tetraoxatetradecan-1-ol
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无锡云萃生物
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957205-14-0
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| 规格： | 5mg | 产品价格： | ￥100.0 |
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文献和实验柱色谱/气相色谱分析Fischer�Tropsch合成液相产物
法所获烯烃以溴加成法进行了验证[1７]，烯烃溴加成所获谱图示于图３c。由图3c可见，烯烃经溴加成后保留时间整体后移。与原烯烃相比，每个烯烃溴加物向后移动近4个碳数。 样品烯烃溴加成物（bromide olefins）。C１２和C１４）及其溴加成物和样品及溴加成物的碳数(n)�色谱保留值(Rt)作图，所获图示于图4。图4a给出了五个纯样烯烃及其溴加物的碳数n�Rt曲线，图4b为柱分离烯烃段分及其溴加物的碳数n�Rt曲线，从图可见，烯烃纯样与其溴加成物的变化规律特征和实际烯烃段分与其溴加成
0.1%溴酚蓝溶液。 10．已知分子 量的标准蛋白（M﹤10 万）4-6种。 11．未知分子量的蛋白质样品。 12．考马斯亮蓝溶液：称取0.25克考马斯亮蓝R－250，加入45毫升甲醇，10毫升冰醋酸和45毫升水，过滤后使用。 13．脱色液：37.5毫升冰醋酸。25毫升甲醇，加水至500毫升。 14．SDS的重结晶：50克SDS加100毫升无水乙醇，70℃下保温溶解。趁热过滤后，于低温下过夜结晶，过滤，用少量无水乙醇或乙醚洗涤二次，于真空干燥器内干燥。 四、操作
缓冲液小心把加样槽液面都补平。电泳槽上部倒满电泳缓冲液（约250ml,淹没过加样槽的液面！），电泳槽的下部倒入一半电泳缓冲液（约180ml）。（12）接好电极，将电流调至10mA，待溴酚蓝移到分离胶后，在将电流调至18mA，电泳约2~3h，期间随时观察电泳槽上部的液体是否有泄漏（泄漏导致液面下降，电流中断）！当溴酚蓝移到玻璃距底部0.5cm时切断电源。（13）在一个搪瓷盘里准备适量的考马斯亮蓝染色液。（14）倒掉电泳槽中的缓冲液，取下玻璃，小心用铲子从下部将带有缺口的玻璃板撬起（切不可损坏胶！）。用铲子
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