脂肪酶Lipase，LPS活性试剂盒

脂肪酶Lipase，LPS活性试剂盒
分光光度法 
注    意：正式测定之前选择2-3个预期差异大的样本做预测定。

测定意义：
LPS又称甘油酯水解酶，催化甘油三酯水解生成脂肪酸和甘油（或者甘油二酯和单酯）。LPS广泛的存在于各种生物中。血清中LPS的异常增高常见于胰腺炎和胰腺癌。 

测定原理：
LPS催化油酯水解成脂肪酸，利用铜皂法测定脂肪酸生成速率，即可计算LPS活性。

自备仪器和用品：
研钵、台式离心机、震荡混匀器、可见分光光度计、1mL玻璃比色皿、可调式移液枪、甲苯100mL、冰和蒸馏水。



试剂组成和配制：
试剂一：液体90mL×1瓶，4℃保存。
试剂二：液体14mL×1瓶，4℃保存。每次使用前用震荡混匀器剧烈震荡20min。
试剂三：甲苯100mL×1瓶，4℃保存（自备）。
试剂四：液体20mL×1瓶，4℃保存。
标准品：液体10μL×1瓶，10 µmol/mL的标准溶液，4℃保存。临用前加入3.168 mL甲苯，充分溶解。

粗酶液提取：
1.组织：按照组织质量（g）：试剂一体积(mL)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1mL试剂一）进行冰浴匀浆。12000g，4℃离心10min，取上清置冰上待测。
2.细菌、真菌：按照细胞数量（104个）：试剂一体积（mL）为500~1000：1的比例（建议500万细胞加入1mL试剂一），冰浴超声波破碎细胞（功率300w，超声3秒，间隔7秒，总时间3min）；然后12000g，4℃，离心10min，取上清置于冰上待测。
3.血清等液体: 直接检测。

LPS测定操作：
1.分光光度计预热30 min以上，调节波长到710 nm，蒸馏水调零。
2. 试剂一和试剂二置于37℃水浴预热30min以上。
2.在5mL EP管中依次加入下列试剂

试剂名称（μL）	空白管	测定管
蒸馏水	375
样本		125
试剂一	750	750
试剂二		250

37℃振荡反应10 min

试剂三

2000

2000

37℃振荡反应10 min后，8000g，25℃，离心10min，取上清液

试剂名称（μL）	空白管	测定管	标准管
上清液	1200	1200
标准品			1200
试剂四	300	300	300

37℃振荡反应5 min后，静置5min，取800μL上层液加入1 mL玻璃比色皿，于710nm处测定吸光值。
注意：空白管和标准管只需测定一次。

脂肪酶Lipase，LPS活性试剂盒
LPS活性计算公式：
1. 组织、细菌或细胞LPS活性
（1）按照蛋白浓度计算
活性单位定义：37℃中每毫克蛋白每分钟水解橄榄油生成1μmol脂肪酸为一个酶活单位。
LPS (μmol/min/mg prot) = [C标准品×(A测定管-A空白管)÷（A标准管- A空白管）]×V反总÷（Cpr×V样）÷T
=16×[(A测定管－A空白管)÷（A标准管- A空白管）]÷Cpr
（2）按照样本质量计算
活性单位定义：37℃中每克组织每分钟水解橄榄油生成1μmol脂肪酸为一个酶活单位。
LPS (μmol/min/g 鲜重) = [C标准品×(A测定管-A空白管)÷（A标准管- A空白管）]×V反总÷（W×V样÷V样总）÷T
=16×[(A测定管－A空白管)÷（A标准管- A空白管）]÷W
（3）按照细菌或者细胞数量计算
活性单位定义：37℃中每104个细胞每分钟水解橄榄油生成1μmol脂肪酸为一个酶活单位。
LPS (μmol /min/104cell) = [C标准品×(A测定管-A空白管)÷（A标准管- A空白管）]×V反总÷（细胞数量×V样÷V样总）÷T
=16×[(A测定管－A空白管)÷（A标准管- A空白管）]÷细胞数量
2. 血清等液体LPS活性
活性单位定义：37℃中每毫升血清每分钟水解橄榄油生成1μmol脂肪酸为一个酶活单位。
LPS (μmol /min/mL) = [C标准品×(A测定管－A空白管)÷（A标准管- A空白管）]×V反总÷V样÷T
=16×[(A测定管－A空白管)÷（A标准管- A空白管）]
C标准品：10 µmol/mL；V反总：反应总体积，2mL；V样：反应中加入样本体积，0.125mL；V样总：加入提取液体积，1mL；Cpr：上清液蛋白质浓度，mg/mL，需要另外测定，建议使用本公司BCA蛋白质含量测定试剂盒；W：样本质量，g；T：催化反应时间，10 min。