血管内皮生长因子-D在急性肺损伤期间改善肺血管完整性

Vascular Endothelial Growth Factor-D Improves Lung Vascular Integrity During Acute Lung Injury

作者信息Yongdae Yoon, Lokesh Sharma, Wenwen Tang, Shannon Kirk, Micha Sam Brickman Raredon, Farida Ahangari, Johad Khoury, Hong Qian, Yunbo Ke, Mohan E Tulapurkar, Ruya Liu, Yi Luan, Qianying Yuan, Lujia Chen, Konstantin G Birukov, Michael Simons, Dianqing Wu, Laura E Niklason, Naftali Kaminski, Yifan Yuan
PMID41822962
期刊Circ Res
发布时间2026-04-24
DOI10.1161/CIRCRESAHA.124.326094

实验完整度

包含scRNAseq计算分析、体外细胞实验(ECIS、Transwell、Western blot)和体内动物模型(LPS诱导ALI)等多层级验证,并进行VEGFR2依赖性机制验证。

主要模型

人肺微血管内皮细胞(HLMVEC) 人肺静脉内皮细胞(HPVEC) 人肺动脉内皮细胞(HPAEC) LPS诱导的急性肺损伤小鼠模型(C57BL/6) VEGFR2iECKO小鼠

重点核对

VEGF-D处理浓度:体外实验使用1 μg/mL(ECIS和Transwell),2 μg/mL(部分实验);体内实验使用225 μg/kg(重组小鼠VEGF-D蛋白,Bio-techne #469-VD-025/CF) LPS诱导ALI模型:雌性C57BL/6小鼠,7-8周龄,LPS剂量0.25 mg/kg气管内注射 VEGFR2抑制:使用siRNA敲低(Santa Cruz #sc-29318)或药理学抑制剂(SU5416、XL184、SU5614) VEGFR2iECKO小鼠:通过他莫昔芬诱导内皮细胞特异性VEGFR2敲除,处理5次(每隔一天一次) 关键检测终点:血管通透性(FITC-白蛋白、Evans blue)、BAL中WBC和PMN计数、肺组织学评分、炎症标志物(ICAM-1、IκBα、TNF-α、IL-6、KC)

摘要

背景:肺血管完整性紊乱是许多肺部疾病的显著特征。旁分泌信号在肺中高度富集,并在调节血管稳态中发挥关键作用。然而,在成年动物和人类中维持肺微血管稳定性的特定局部细胞间串扰信号在很大程度上仍未被探索。方法:在本研究中,我们采用基于单细胞RNA测序(scRNAseq)的计算流程系统地分析了肺微血管生态位内的配体-受体(L/R)相互作用,并确定了血管内皮生长因子-D(VEGF-D)是一个关键的局部因子,在急性肺损伤模型中具有先前未被认识的屏障保护特性。结果:我们的scRNAseq数据显示,在生理条件下,间充质细胞(特别是肺泡成纤维细胞)与微血管内皮细胞之间的可溶性L/R相互作用主要与维持血管完整性的通路相关,相比于所有其他细胞。在使用排名靠前的配体处理后,我们发现VEGF-D显著增强了内皮屏障功能,并赋予了对肿瘤坏死因子-α(TNF-α)、白细胞介素-1β(IL-1β)和凝血酶诱导的炎症挑战的保护作用。VEGF-D的这种屏障保护作用通过抑制VEGFR2(无论是通过siRNA敲低还是使用特异性VEGFR2抑制剂的药理学阻断)而显著减弱。在脂多糖(LPS)诱导的急性肺损伤模型中,静脉注射重组VEGF-D显著降低了血管通透性(7339 ± 2510 a.u.(LPS)对比 5350 ± 1821 a.u.(LPS + VEGF-D),p < 0.05)、免疫细胞浸润(0.791 ± 0.199 x 10^6 WBC/mL(LPS)对比 0.540 ± 0.190 x 10^6 WBC/mL(LPS + VEGF-D),p < 0.01)以及肺组织中促炎标志物TNF-α、IL-6和角质形成细胞趋化因子(KC)的表达。这种效应在VEGFR2iECKO小鼠中被消除,证实VEGF-D通过VEGFR2依赖性信号传导介导其效应。结论:这项研究表明VEGF-D在促进肺内皮屏障完整性方面具有意想不到的保护作用,并提示来自肺泡成纤维细胞生态位的旁分泌信号对肺毛细血管稳态有重要贡献。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
在成年人类和动物肺中,哪些局部细胞间旁分泌信号维持肺微血管稳定性,以及它们在急性肺损伤中是否具有保护作用?
核心机制
VEGF-D通过VEGFR2依赖性信号传导增强内皮屏障功能并抑制炎症反应。具体机制涉及通过VEGFR2激活(Y951和Y1175位点磷酸化)调控肌动蛋白细胞骨架重组(降低p-MLC),并抑制TNF-α诱导的NF-κB通路激活(维持IκBα水平)。
主要证据
scRNAseq分析显示肺泡成纤维细胞与微血管内皮细胞间的VEGFD-VEGFR2相互作用;体外实验证明VEGF-D增强ECIS电阻并降低FITC-dextran通透性,抑制TNF-α、IL-1β和凝血酶诱导的屏障破坏;体内LPS诱导ALI模型中,VEGF-D降低FITC-白蛋白外渗、Evans blue积累和炎症细胞浸润。VEGFR2抑制或敲除可消除VEGF-D的效应,VEGFR2iECKO小鼠中保护作用消失。
研究意义
该研究揭示了VEGF-D在维持肺内皮屏障完整性中的意外保护作用,并提示肺泡成纤维细胞生态位的旁分泌信号对肺毛细血管稳态至关重要,为治疗与肺血管渗漏相关的疾病(如ALI/ARDS)提供了潜在的新治疗靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

scRNAseq数据分析和L/R相互作用鉴定

鉴定肺微血管生态位中介导细胞间通讯的候选配体-受体对,并优先考虑来自肺泡成纤维细胞的潜在屏障保护信号。

对已发表的人类健康肺scRNAseq数据集(GSE164829)进行重新分析和注释,使用Connectome和NICHES计算流程分析微血管内皮细胞(aCap和gCap)与非内皮细胞间的L/R相互作用。随后通过免疫荧光染色和ELISA在蛋白水平验证了部分关键L/R对(如SLIT2-ROBO4、VEGFD-VEGFR2)的表达和分泌。

2

体外内皮屏障功能评估

评估候选配体(尤其是VEGF-D)对人肺微血管内皮细胞屏障功能的影响,并验证其对炎症因子诱导的屏障破坏的保护作用。

使用ECIS实时监测HLMVEC、HPVEC和HPAEC的跨内皮电阻;使用Transwell实验测量FITC-dextran的通透性;使用XperT实验可视化FITC-avidin的渗透;通过免疫荧光检测VE-Cadherin、ZO-1和F-actin的分布;通过Western blot检测p-MLC水平。

3

体外抗炎效应评估

检测VEGF-D预处理对内皮细胞炎症反应的影响,并探讨其分子机制。

HLMVEC经VEGF-D预处理后,用TNF-α刺激,检测炎症相关基因(ICAM1、VCAM1、IL6、CXCL5、TNF、IL8)的表达,通过Western blot检测ICAM-1、IκBα、NF-κB蛋白水平,通过ELISA检测可溶性ICAM-1水平。

4

体内急性肺损伤模型评估

评估VEGF-D在LPS诱导的急性肺损伤小鼠模型中对血管渗漏、炎症和肺损伤的保护作用。

通过气管内注射LPS建立ALI模型,随后静脉注射重组VEGF-D或生理盐水。通过FITC-白蛋白和Evans blue评估血管通透性,通过BAL计数WBC和PMN,通过组织学评分评估肺损伤,通过Western blot和ELISA检测炎症标志物。

5

VEGFR2依赖性机制验证

验证VEGF-D的屏障保护和抗炎效应是否通过VEGFR2信号通路介导。

在体外,通过siRNA敲低或药理学抑制剂(SU5416、XL184、SU5614)阻断VEGFR2,检测VEGF-D对ECIS电阻、ICAM-1和IκBα表达的影响。在体内,使用VEGFR2iECKO小鼠,评估VEGF-D对LPS诱导的WBC计数和肺组织学评分的影响。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
骨形态发生蛋白5Novus Biologicals615-BMC-020
血管内皮生长因子-DCayman Chemical32055
肾上腺髓质素Cayman Chemical24889
血管生成素-1Novus Biologicals923-AN
肿瘤坏死因子-αR&D Systems10291-TA
Slit同源物2R&D Systems8616-SL
CXC趋化因子配体6R&D Systems333-GC-025/CF
多效生长因子R&D Systems252-PL
信号素6DR&D Systems2095-S6
人肺微血管内皮细胞LonzaCC-2527
人肺静脉内皮细胞Cell BiologicsH-6060
人肺动脉内皮细胞LonzaCC02530
SLIT2抗体Thermo Fisher ScientificPA5-31133
ROBO4抗体R&D SystemsAF2366
ADM抗体BiossBS-0007R
RAMP2抗体Santa Cruz Biotechnologysc-365240
BMP5抗体Thermo Fisher ScientificPA5-78878
BMPR2抗体Thermo Fisher ScientificMA5-15827
VEGFD抗体Thermo Fisher ScientificPA5-13300
VEGFR2抗体Santa Cruz Biotechnologysc-6251
ITGA8抗体Novus BiologicalsAF4076
PRX抗体Novus BiologicalsNBP1-89598
VE-钙黏蛋白抗体Abcamab33168
ZO-1抗体Thermo Fisher Scientific40-2200
罗丹明标记的鬼笔环肽Thermo Fisher ScientificR415
DAPIThermo Fisher Scientific62248
RNA提取试剂盒Qiagen--
cDNA合成试剂盒Bio-Rad--
SYBR green引物IDT Technologies--
实时荧光定量PCR系统Bio-Rad--
SLIT2 ELISA试剂盒Novus BiologicalsNBP2-82455
ADM ELISA试剂盒Novus BiologicalsNBP2-78738
BMP5 ELISA试剂盒Novus BiologicalsNBP2-69996
VEGFD ELISA试剂盒Novus BiologicalsNBP2-78890
人ICAM-1 ELISA试剂盒R&D SystemsDY720
透明微孔板R&D SystemsDY990
Spectra MAX iD5酶标仪Molecular Devices--
ECIS板----
L-半胱氨酸----
纤连蛋白----
Transwell小室----
FITC-葡聚糖Sigma-AldrichFD20S
FITC-亲和素----
2x Laemmli上样缓冲液Bio-Rad1610737
PVDF膜Millipore--
IκBα抗体Cell Signaling Technology4814
NF-κB p65抗体Cell Signaling Technology4764
磷酸化肌球蛋白轻链2(Thr18/Ser19)抗体Cell Signaling Technology3674
VEGFR2抗体Cell Signaling Technology2479
磷酸化VEGFR2(Tyr951)抗体Cell Signaling Technology2471
磷酸化VEGFR2(Tyr1175)抗体Cell Signaling Technology2478
ICAM-1抗体Santa Cruz Biotechnologysc-8439
β-肌动蛋白抗体Thermo Fisher ScientificMA5-15739
SuperSignal West Pico PLUS化学发光底物Thermo Fisher Scientific34580
SuperSignal West Atto超灵敏底物Thermo Fisher ScientificA38556
ChemiDoc XRS+成像系统Bio-Rad--
VEGFR2 siRNASanta Cruz Biotechnologysc-29318
对照siRNASanta Cruz Biotechnologysc-37007
Lipofectamine RNAiMAX转染试剂Thermo Fisher Scientific13778075
VascuLife VEGF内皮培养基LifeLineLL-0003
VEGFR2iECKO小鼠----
C57BL/6小鼠Jax Laboratory000664
重组小鼠VEGF-D蛋白Bio-techne469-VD-025/CF
脂多糖----
FITC标记的白蛋白----
伊文思蓝----
BCA蛋白定量试剂盒Bio-Rad5000001
胶原酶/分散酶Roche--
羊抗大鼠IgG磁珠Thermo Fisher Scientific--
大鼠抗小鼠CD31抗体BD Pharmingen557355
大鼠抗小鼠ICAM2抗体BD Pharmingen553326
Leica SP5共聚焦显微镜Leica--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
scRNAseq数据分析
数据集来源(GSE164829)、样本信息(68名健康成人,中位年龄50岁)、细胞类型注释标准、L/R筛选阈值(p_adjust < 1e-5,表达细胞比例 > 20%)
阅读提示:Methods 2.1和2.2,图1和图2图注
体外内皮细胞培养
细胞类型(HLMVEC、HPVEC、HPAEC)、来源(Lonza、Cell Biologics)、传代次数、培养基(VascuLife VEGF Endothelial Medium + 12.5% FBS + 1.5% Antibiotics/Antimycotics)
阅读提示:Methods 2.10,图3图注
ECIS和Transwell实验
ECIS板包被条件(L-cysteine、fibronectin)、细胞接种密度(50,000 cells/cm²)、配体处理浓度和时间、FITC-dextran分子量和浓度(20 kDa, 1 mg/mL)、炎性刺激条件(TNF-α 1 ng/mL 5h; IL-1β 5 ng/mL 5h; thrombin 10 U/mL 20min)
阅读提示:Methods 2.6和2.7,图3图注
Western blot实验
细胞或组织裂解方法、凝胶浓度(8%、10%、12%)、抗体来源和货号、化学发光底物选择
阅读提示:Methods 2.9,图4和图6图注
LPS诱导ALI动物模型
小鼠品系(C57BL/6)、性别(雌性)、年龄(7-8周)、LPS剂量(0.25 mg/kg)、给药途径(气管内)、VEGF-D剂量(225 μg/kg)、给药途径(眶后静脉)、给药时间(LPS后30分钟)、检测时间点(LPS后18小时)
阅读提示:Methods 2.11,图5图注
血管通透性测定
FITC-白蛋白剂量(10 mg/mL, 100 μL)、注射途径(眶后)、注射时间(处死前2小时)、Evans blue剂量(30 mg/kg)、注射途径(眶后)、注射时间(实验结束前2小时)
阅读提示:Methods 2.12,图5图注
VEGFR2抑制剂/敲低实验
抑制剂名称和浓度(SU5416 5 μM、XL184、SU5614)、siRNA序列或货号、转染试剂(Lipofectamine RNAiMAX)、转染时间
阅读提示:Methods 2.10,图6图注
VEGFR2iECKO小鼠实验
小鼠基因型(VEGFR2fl/fl 与 Cdh5-cre/ERT2)、他莫昔芬注射方案(5次,每隔一天)、实验前等待时间(30-32天)、LPS和VEGF-D处理
阅读提示:Methods 2.14,图6图注