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技术资料/正文
1264 人阅读发布时间:2025-05-16 08:49
1. 细胞背景与培养条件
LD-1是一种来源于小鼠胆管癌的高侵袭性细胞系,具有强增殖能力和转移潜能,是研究胆管癌发病机制及药物开发的理想模型。
培养基:推荐使用含10%胎牛血清(FBS)的RPMI-1640培养基,补充1%青霉素-链霉素双抗。
培养环境:37℃、5% CO₂恒温恒湿培养箱,每2-3天传代一次,密度控制在80%融合度。
传代操作:胰酶消化后离心重悬,按1:3比例分瓶,避免过度消化导致细胞损伤。
2. 细胞形态与鉴定
形态学特征:贴壁生长,呈梭形或多角形,核质比高,边缘伪足明显(图1)。
鉴定方法:通过STR基因分型、免疫荧光标记(CK19、EpCAM阳性)及qPCR检测胆管癌标志物(如SOX9、KRT7)确保细胞纯度。
1. 动态监测与表型分析
活细胞成像:利用延时摄影追踪细胞迁移轨迹,量化侵袭速度(推荐Transwell实验)。
荧光标记技术:通过GFP标记LD-1构建稳转株,实时观察体内外转移过程。
凋亡与增殖检测:CCK-8、EdU染色评估药物对细胞活性的影响;Annexin V/PI双染分析凋亡率。
2. 功能实验设计
肿瘤微环境模拟:与成纤维细胞共培养,研究基质细胞对LD-1侵袭的促进作用。
药物敏感性筛选:测试化疗药物(如吉西他滨)或靶向药(FGFR抑制剂)的IC50值,建立剂量响应曲线。
基因编辑应用:CRISPR-Cas9敲除关键基因(如MET或VEGF),探索其对胆管癌转移的调控机制。
1. 胆管癌机制研究的突破口
分子通路解析:LD-1的高转移特性为研究EMT(上皮间质转化)、血管生成等通路提供数据支持。
耐药性研究:通过长期低剂量药物诱导,构建耐药株,挖掘耐药相关基因(如ABC转运蛋白家族)。
2. 精准医疗与药物开发
类器官共培养系统:将LD-1与患者来源类器官结合,模拟个体化肿瘤微环境。
免疫治疗评估:构建人源化小鼠模型,测试PD-1/PD-L1抑制剂联合疗法的效果。
3. 技术融合与创新
3D生物打印:利用LD-1构建胆管癌仿生模型,提升药物预测准确性。
单细胞测序:揭示LD-1异质性,识别驱动转移的稀有亚群。
人工智能辅助分析:结合AI图像识别技术,实现细胞行为的高通量量化。
多组学整合:通过蛋白组、代谢组数据,全面解析LD-1的分子特征。
临床前转化:推动LD-1模型与临床样本数据的关联分析,加速靶点发现。
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