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技术资料/正文
280 人阅读发布时间:2024-12-26 12:57
细胞培养的基本概念
什么是细胞培养
细胞培养,英文是cell culture,是指从体内组织取出细胞,在体外模拟体内环境下,使细胞生长繁殖,并维持其结构和功能的一种培养技术。细胞培养的培养物可以是单个细胞,也可以是细胞群。
细胞培养的目的与用途
一、基础研究
(1)药物作用机理
(2)基因功能
(3)疾病发生机理
二、科学研究:
(1)新药筛选:如药效研究,中药有效成分筛选等.
(2)疫苗研究与开发:如肝炎疫苗,艾滋病疫苗,肿瘤疫苗等.
(3)基因工程药物与细胞工程药物的研究与开发
(4)单克隆抗体制备
细胞培养常用的设施器材
设施:超净台、恒温培养箱、倒置显微镜、液氮储存罐、冰柜、恒温水浴槽、离心机、压力蒸汽消毒器。
器材:
1、玻璃器材
玻璃培养皿、刻度吸管、离心管、培养瓶等。
2、塑料器材
多孔培养板(6,12,24,48,96孔)、培养皿、培养瓶、离心管、冻存管。
3、橡皮器材
橡皮制品(最好是硅制品)做各种瓶或试管的塞子、盖子。
4、金属器材
剪刀、镊子、手术刀、解剖刀、血管钳、组织镊、眼科镊及各种型号针头
5、其他物品
纱布、注射器、针头、滤头
细胞培养的环境条件
1、适宜的温度和PH
37℃,pH7.2~7.4。
2、气体环境
95%空气+5%CO2;适宜的湿度(无菌,水不能干掉)。
(CO2:细胞生长所必需的成分,pH值维持,最低不能低于1%。)
3、营养物质
细胞培养基中含有:N源、C源、无机盐、维生素、H 2 O;
常用的细胞培养基:DMEM,RPMI-1640,BME,M199等。
4、无菌条件
紫外消毒、空气过滤、无菌滤头,高压灭菌、严格操作。
培养细胞的分类
按照是否贴壁划分:
贴壁细胞:大多数属此类细胞,如肿瘤细胞、成纤维细胞、平滑肌细胞、神经胶质细胞等。
悬浮细胞:主要为取自血、骨髓、脾的细胞,如白血病细胞。
按照传代次数划分:
原代细胞:即从体内取出组织接种培养而未经传代的细胞。(也有人把传代10次之内的细胞统称为原代细胞。)
细胞系:指原代细胞培养物经首次传代成功后所繁殖的细胞群体。如HeLa细胞、CHO细胞等。
原代细胞培养
原理:将动物机体的各种组织从机体中取出,经各种酶(常用胰蛋白酶)、螯合剂(常用EDTA)或机械方法处理,分散成单细胞,置合适的培养基中培养,使细胞得以生存、生长和繁殖。
如何培养原代细胞?
原代培养方法:消化培养法、组织块培养法。
原代消化培养法
(1)处理组织:用Hanks液漂洗组织2~3次,去除血污;如怀疑组织可能污染,可先置于含有青链霉素的混合液中30~60分钟。
(2)剪切:将组织切成2~3毫米大小的块,加入胰蛋白酶液,然后一并倒入培养皿中。
(3)消化:置于37℃温箱消化,每隔20分钟摇动一次。消化时间依组织块的大小和组织的硬度而定。
(4)分离:用吸管吸出少许消化液在镜下观察,如组织已分散成细胞团或单个细胞,立即终止消化,随即通过适宜不锈钢筛,滤掉尚未充分消化开的组织块。低速(500~1000转/分)离心收集细胞,弃上清。
(5)加入适量培养基重悬细胞,分装入培养瓶中,补足培养基。
(6)培养:置于37℃,5%CO2温箱培养。
原代组织块培养法
(1)剪切:用Hanks液漂洗二三次以去掉组织块表面血污,剪成1mm3小块。
(2)摆布:将组织小块摆布在培养瓶底部,小块相互距离以0.5cm为宜,每一25ml培养瓶底可摆布20~30块。
(3)轻轻翻转培养瓶,令瓶底向上,注意翻瓶时勿另组织小块流动,盖好瓶塞,置36.5℃温箱培养2小时左右(勿超过4小时),使小块微干涸。
(4)培养:从微箱中取出培养瓶,46度斜持培养瓶,向瓶底脚部轻轻注入培养液少许,然后缓缓再把培养瓶翻转过来,让培养液慢慢覆盖附于瓶底上的组织小块。置温箱中静止培养。待细胞从组织块游出数量增多后。再补加培养液。
细胞的传代
什么是细胞传代?
细胞代传,英文是cell passage,是指随着培养时间的延长和细胞不断分裂,一则细胞之间相互接触而发生接触性抑制,生长速度减慢甚至停止;另一方面也会因营养物不足和代谢物积累而不利于生长或发生中毒。此时就需要将原有细胞分成几部分,重新接种到另外的培养器皿(瓶)内,再进行培养,这个过程就称为传代。
细胞传代方法:
1、悬浮细胞传代
2、贴壁细胞传代
悬浮细胞传代:
(1)收集细胞悬液,培养;
(2)离心(1000转/分,2分钟);
(3)弃上清;
(4)加入新鲜培养基重悬细胞;
(5)按照适当比例接种到新的培养皿;
(6)补足培养基;
(7)放于温箱培养。
贴壁细胞的传代:
(1)吸去陈旧培养基,并用PBS清洗细胞表面;
(2)加入胰酶消化细胞;
(3)加入新鲜培养基终止胰酶消化;
(4)将细胞吹打下来,收集,离心;
(5)弃上清;
(6)加入新鲜培养基重悬细胞;
(7)按照适当比例接种到新的培养皿;
(8)补足培养基;
(9)放于温箱培养。
贴壁细胞的传代-1.png
图2.贴壁细胞传代流程
细胞的换液
悬浮细胞换液:收集细胞悬液、离心、弃上清、加入新鲜培养基重悬、补足培养基。或者直接从旧瓶吸取一定细胞悬液加入新瓶,补足新鲜培养基即可。
贴壁细胞换液:弃去陈旧培养基、PBS清洗细胞表面、加入新鲜培养基。
细胞的冻存
悬浮细胞的冻存:
1、配制冻存液(胎牛血清:二甲基亚砜9:1),每个冻存管需要冻存液1ml。
2、收集细胞悬液、离心、弃上清、用冻存液重悬细胞、分装至冻存管中,并立刻放入冻存盒内,放入-80℃冰箱,第二日转存于液氮中。
贴壁细胞的冻存:
1、配制冻存液。
2、弃去陈旧培养基,PBS清洗细胞表面,胰酶消化,终止消化,吹打细胞,收集悬液、离心、弃上清、用冻存液重悬细胞、分装至冻存管中,并立刻放入冻存盒内,放入-80℃冰箱,第二日转存于液氮中。
美格提醒细胞冻存的注意事项:
1、冻存液要最先配置。
原因一:二甲基亚砜(DMSO)在加入血清时会产热损伤细胞。
原因二:如果先用血清重悬细胞,再加入DMSO,则局部DMSO浓度过高,会对细胞造成严重损伤(DMSO在室温下对细胞有害),影响日后的复苏。
2、冻存时要求细胞状态良好,最好是取对数期细胞冻存,以保证复苏后的存活率。
3、最大限度的减少DMSO在室温下和细胞接触的时间。
4、冻存时要缓慢降温(慢冻),用细胞冻存盒可以做到每分钟降低1℃,细胞冻存盒应先放在4℃预冷,以减少细胞和DMSO在室温接触的时间;如果没有冻存盒,则采用程序降温法。(4℃冰箱40min,-20℃冰箱30-60min,置于-80℃过夜,次日转入液氮。)
细胞的复苏
悬浮细胞和贴壁细胞的复苏方法一样,区别在于复苏后死细胞的清除方法。
细胞复苏流程:
1、取一支离心管,加入3ml的新鲜培养基备用。
2、取出冻存的细胞,于37℃的温水中,1min之内迅速融化。
3、迅速将解冻后的细胞加入预先准备好的离心管中,1000转/分钟,离心1分钟。
4、弃上清,加入新鲜培养基重悬细胞。
5、接种到培养皿(瓶)内,补足培养基,放入温箱培养。
复苏后死细胞的清除方法:
悬浮细胞:细胞复苏后,每2天按照2:1或3:1的比例传代一次,大约1周后,细胞生长状态良好。
贴壁细胞:细胞复苏后6h(此时已有细胞贴壁),吸去培养基(含有大量死细胞),重新加入新鲜培养基。
美格君提醒细胞复苏的注意事项
1、细胞复苏原则:快速融化(快融)。
2、尽量减少室温下DMSO和细胞接触的时间。
①预先准备好离心管并加入新鲜培养液;
②在1分钟之内将细胞融化;
③立刻将融化后的细胞倒入离心管中。
3、复苏时,离心时间不宜过长,1分钟即可,长时间离心会对细胞造成损伤,降低细胞存活率。
4、死亡的细胞应尽快清除掉,否则会影响存活细胞的状态。
5、如果复苏不成功,更可能是因为冻存或保存过程中出现问题。
细胞污染时的处理
有细胞株留存的或可购置的,可在寻找原因后彻底消毒操作室,复苏或重新购置细胞,再培养。
若污染细胞价值较大,又难于重新得到,可采取以下办法清除。
1、使用抗生素
污染后清除用药需采用大于常用量5~10倍的冲洗法,于加药后作用24~48小时,再换常规培养液。此法在污染早期有效。
2、加温处理
将污染的组织培养物放在41℃培养18小时,可杀死支原体,但对细胞有不良影响。所以在处理前要进行预试验,摸索能最大限度杀死支原体又对细胞影响最小的加热时间。若先用药物处理后,再以41℃加温处理效果更佳。
其他注意事项
1、细胞房要定期擦拭:包括地面、桌面、超净台等,先用自来水擦拭,再用消毒液(3‰的来苏尔或者新洁尔灭)擦拭,之后打开紫外灯,照射2h。
2、细胞培养箱定期灭菌:将培养箱中的铁架取出,高压灭菌,箱内壁用75%酒精擦拭,再用消毒液擦拭,紫外照射过夜。
3、及时更换CO 2罐和HEPA过滤器,确保培养箱中有充足的无菌水。
4、及时补充液氮,不可使细胞露出液氮表面。
5、进入细胞房要更换无菌服,带好手套、口罩、鞋套等。