蛋白表达-破菌操作程序

   2018-10-15
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1、仪器及试剂

试剂: LB 培养基、1*PBS、IPTG、巯基乙醇(或 DTT)、8M 尿素、3*SDS 上样缓冲液、12% 分离胶、5% 浓缩胶、10% 过硫酸铵、TEMED、1*SDS-PAGE 电泳缓冲液、乙醇、乙酸、考马斯亮蓝(R250)

仪器:灭菌锅、无菌操作台、移液器、恒温摇床、分光光度计、高速离心机、超声波破菌机、电泳槽、电泳仪、脱色摇床、凝胶成像系统

2、诱导:

  • 取出灭菌的 LB 培养基(300 ml)加入对应抗生素,取出 2 ml 放入比色皿中,作为标准溶液。

  • 将上述已有表达的菌液加入 LB 培养基中,恒温摇床 37 摄氏度 3-4 小时测 OD 值,当 OD 值到达 0.5-0.6 之间时加入 IPTG 诱导(300μl)3-4 小时。

  • 将菌液倒入离心瓶中离心(3900 转/min 10 min)弃上清液。

  • 需要过夜保存时将离心好的菌液放于 -20 度冰柜。

3、破菌:

  • 取 50 ml 的 1×PBS,悬浮菌体。加入 50μl 巯基乙醇(还原作用,防止细胞氧化).

  • 选择好合适的变幅杆,功率 400W,破菌时间 3S,间隔时间 3S,共 10 min,超声破菌(菌液置于冰块中)。离心(9000 转/min)10 min 得到上清液①和沉淀,上清①装于 50 ml 离心管中,暂时放 4 度保存。

  • 沉淀先用去离子水小心洗 2 边包括管壁,称取 6 g 尿素用 1×PBS 溶解定容到 44 ml,倒入沉淀中,吹匀沉淀,倒入 50 ml 的烧杯中,功率 400W,破菌时间 3S,间隔时间 3S,共 5 min 破菌(菌液置于冰块中),离心(9000 转/min)10 min 得到上清液 ② 和包涵体,上清 ① 装于 50 ml 离心管中,暂时放 4 度保存。

  • 沉淀先用去离子水小心洗 2 边包括管壁,包涵体加入 6 ml ddH2O,悬浮后平均分装到 4 个 2 ml 的离心管中,离心(12000 转/min)2 min。弃上清。选取其中一管加入 1.5 ml 8M 的尿素,溶解、离心(12000 转/min)1 min 上清移入到新的 2 ml 离心管中。

4、SDS-PAGE 电泳确定蛋白表达位置及纯度:

将得到的上清液①上清液② 包涵体做 10 倍稀释和 50 倍稀释电泳,染色、脱色后确定蛋白表达的位置, 上清则需要经过标签纯化,如不在上清,及时处理掉放于 4 度冰箱的上清。如在包涵体且纯度达到要求 90% 以上,则将包涵体保存在指定的盒子中,放-20 度保存。

注意事项:

  • 诱导时菌体浓度,OD 值范围 0.5-0.6;

  • 根据第一次破菌之后沉淀多少决定是否需要第二次破菌;

  • 避免连续超声导致大量产热,可分成短时间、多次超声;

  • 如果表达载体的原核启动子为 PL 启动子,则在 30 -32 培养数小时,使培养液的 OD600 达 0.4-0.6,迅速使温度升至 42 继续培养 3 -5 h;如果表达载体的原核启动子为 tac 等,则 37 ℃ 培养细菌数小时达到对数生长期后加 IPTG 至终浓度为 1 mmol / L。继续培养 3-5 小时。

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编辑: zhuq    来源:丁香园

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