分子克隆操作程序

   2018-10-15
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实验试剂及仪器

试剂:质粒 DNA 小量试剂盒,DNA 凝胶回收试剂盒,DNA 产物回收试剂盒,DNA 产物回收试剂盒,Pfu,DNA marker,感受态 DH5α, BamHI 酶,XhoI 酶,EcoRI 酶,T4 DNA ligase

实验仪器: PCR 仪, 离心机,凝胶成像系统:Tanon 2500,天能公司 

耗材:实验中所用到的 PCR 管,枪头

试验步骤

1、引物的稀释

引物一般以干粉形式保存于-20℃,临用前稀释。

由于引物呈很轻的干膜状附在管壁上,打开时极易散失,所以打开管子前请先离心10,000 rpm,1 min, 然后再慢慢打开管盖。然后在装有引物的管内根据引物说明书加入双蒸水稀释至 10μM,盖上管盖,充分上下振荡 30 秒,再次离心,小离心机 30 秒 (管上标注好引物名称、浓度、稀释时间)

2、PCR 扩增反应体系

在 0.2 ml 离心管中加入以下成分:

微信截图_20181017105644.png
(做多管的时候可以把除引物模板以外的组分混合后分装)

轻弹混匀,离心收集管壁上的液滴至管底, 在 PCR 扩增仪上进行 PCR 反应,反应参数如下(不同基因的退火温度以及延伸时间略有差异, 退火温度为引物 Tm 上下 5℃)

微信截图_20181017105730.png

反应结束后,取2μl  PCR产物进行 1% 琼脂糖凝胶电泳,并以 DNA Marker 6ul 做对照。120V恒压条件下电泳 20 min 后,于凝胶成像系统下观察并将电泳图贴到记录本中(扩增产物大约30ng/μl

3、PCR 产物的回收

如果扩增产物条带单一用 Axygen AP-PCR-250 纯化 PCR 产物,具体操作按试剂盒说明书进行(回收产物用 35ul ddH2O 洗脱两遍)

如果出现非特异性扩增,目的产物用 AxyPrep DNA 凝胶回收试剂盒回收(AP-GX-250),具体操作按试剂盒说明书进行(回收产物用 35ul ddH2O 洗脱两遍)

4、目的产物及载体酶切

目的产物酶切(在 1.5 ml 离心管中加入以下成分, 以 BamHI 和 XhoI 为例)

微信截图_20181017110148.png
振荡混匀,短暂离心;

载体酶切(载体使用中抽质粒试剂盒)

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37℃ 温育 过夜;80℃ 水浴 20 min 终止反应

5、酶切产物回收

酶切产物用 DNA 产物回收试剂盒回收,具体操作按试剂盒说明书进行(目的产物酶切用 35uddH2O 洗脱两遍,载体酶切用 50ul ddH2O 洗脱两遍),将电泳图贴到记录本中。

6、目的片段与载体连接

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振荡混匀,短暂离心。16℃ 连接过夜;65℃ 灭活 10 min

(加入载体的量(ng)× 插入片段大小(Kb))/载体大小(Kb)× 插入片段和载体的摩尔比= 插入片段的量

7、转化(感受态 DH5α)

将 100 ml 感受态 分为两管进行转化,具体步骤按照说明书进行。

8、挑菌鉴定阳性克隆

每个平板挑三个单克隆,分别培养在装有 2 ml LB 培养基的试管中,150 rpm 培养过夜。或培养在装有 1 ml LB 培养基的试管中 ,180 rpm 培养 4~5 小时 ,进行 PCR 鉴定。

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轻弹混匀,瞬时离心收集管壁上的液滴至管底, 在 PCR 扩增仪上进行 PCR 反应,反应参数如下

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反应结束后,取 2ul PCR 产物进行 1% 琼脂糖凝胶电泳,并以 DNA Marker 6ul 做对照。120V恒压条件下电泳 20 min 后,于凝胶成像系统下观察是否含有目的条带, 保存图片并且贴于笔记本中。

选择一个阳性克隆菌液(200ul)送测序,其余的阳性克隆菌液保存于 4℃,待测序结果出来后处理(测序结果正确,菌液丢弃;不正确,补送其他样品测序)

如果插入片段大于 900,正反测序;小于 900,P3 载体反向测序(T7 ter 引物);pGEX-4T载体 插入片段离正向引物较近,选择反向测序(pGEX-R),对比测序结果,做好记录。

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编辑: zhuq    来源:丁香园

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