标签: 多态性 PCR 限制性 RFLP
限制性片段长度多态性(restrictionfragmentlengthpolymorphism,RFLP)分析技术是分子生物学的重要分析方法之一,主要用于(1)检测DNA序列多态性,(2)探索基因的多样性。
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2. 通过凝胶电泳分析这些片段,就形成不同的带,然后再与克隆DNA探针进行southern杂交和放射显影,即获得反映个体特异性的RFLP图谱,它所代表的是基因组DNA在限制性内切酶消化后产生片段在长度上差异。
1.PCR扩增:PCR反应体系为20μl,含模板2μl(约50ng),引物各1.6μl,dNTP1.6μl(0.4mM),10×Buffer缓冲液2μl,Taq酶0.5U,加双蒸水至20.0μl;PCR反应条件为95℃2min,94℃30sec/64℃30sec/72℃30sec(5个循环),94℃30sec/63℃30sec/72℃30sec(5个循环),94℃30sec/60℃30sec/72℃25sec(23个循环),94℃30sec/60℃30sec/72℃1min。
2.PCR 扩增产物的检测:取PCR 扩增产物2μl,以1%的琼脂糖凝胶潜水电泳法检测靶DNA 片段的扩增产物。
3.酶消化反应:取PCR 产物约2.0μl,加限制性内切酶BstN I1U,10×酶消化反应缓冲液1.0μl,蒸溜水补至10.0μl 置试验管中。37℃温箱中孵育4h。
4.酶切产物电泳分型:6%聚丙烯酰胺凝胶电泳(T=6%,C=3.3%,凝胶规格为82mm×64mm×0.75mm)。电极缓冲液为1×TBE。将加有1/5 体积上样缓冲液的酶切产物电泳,220 v 电压,电泳2——3h。
5.银染显色将凝胶剥离至染色盘中,用10%冰醋酸固定30min,去除固定液,用蒸馏水冲洗凝胶3 次(2min 以内)。将0.1%硝酸银溶液200ml 倒入染色盘中,染色30min,倒掉染色液,蒸馏水快速冲洗凝胶1 次(20s 以内)。显色液200ml(3%Na2CO3,含0.05%甲醛,2‰Na2S2O3)倒入染色盘中,不断震荡,直至谱带显示清晰。用固定液终止显色。蒸馏水洗涤一次,贴于滤纸上晾干保存。
1.靶片段的扩增产物要纯,如有非特异产物(特别是大片段可能含有酶识别序列)将竞争酶活性,使样品消化不完全或及出现酶消化杂带;
2.酶消化过程要充分(即底物与酶的比例要合适,消化时间要保证),避免假阴性结果;
3.酶切阳性结果可以确定所检测具体序列,阴性结果仅可说明非酶识别序列,但不能准确判定具体序列。
4.酶识别序列如有甲基化之核苷酸将不被切割。
1. 由于不同个体的等位基因之间的碱基之间的替换、重排、缺失等变化会导致限制内切酶识别和酶切发生改变从而造成基因型间限制性片段长度的差异。
2. 不同个体DNA的提取:(1)采用适当的化学试剂裂解细胞,或者用组织匀浆器研磨破损组织中的细胞;(2)用蛋白酶和RNA酶消化大部分蛋白质和RNA;(3)用有机试剂(酚、氯仿)等抽提方法去除蛋白质。
PCR-RFLP实验中遇到的问题
我最近做酶切的实验,PCR的产物经电泳观察,结果很好,但是PCR产物再酶切的时候就遇到问题了~酶切的反应体系是20ul,分别是 9.5ul ddH2O,8ul PCR 产物,2ul Buffer,0.5ul 内切酶,内切酶买的是NEB的,根据说明37℃温育1h,但是试了一个位点的大概60个标本之后,没有一个能切下来的,后来怕温育的时间不够,就2h,4h,过夜的都试过,还是没有酶切条带,请各位前辈帮我分析下原因,或者我实验中有什么要改进的......再此谢过!
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