建议在每次临床标本检测时,同时分析质控品、阴性对照。
1. 取亚硫酸盐修饰后待测样本 DNA。
2. 试剂盒室温解冻,从试剂盒中取出 PCR 反应液和 DNA 聚合酶,颠倒混匀。
3. 按检测标本数量,加上质控品和阴性对照,计算需要的 PCR 反应液和 DNA 聚合酶体积,以下表为例,如果检测 3 个样本,分别取 75µL PCR 反应液和 1.5µL DNA 聚合酶,加入一个新的 EP 管中,颠倒混匀,瞬时离心。
样本数量 | PCR 反应液(μL) | DNA 聚合酶(μL) |
1 | 45 | 0.9 |
275 | 60 | 1.2 |
3 | 75 | 1.5 |
4 | 90 | 1.8 |
… | … | … |
N | 15(N+2) | 0.3(N+2) |
4. 把 PCR 反应管按顺序摆放在 PCR 管架上(做好标记),轻轻揭开 PCR 反应管的管盖。分别取上述混匀的试剂(PCR 反应液和 DNA 聚合酶)15µL 加入 PCR 反应管,再加入 DNA 样本 5 µL,颠倒混匀(切勿振荡混匀),小心盖上反应管盖,瞬时离心。
5. 按步骤 3 的方法,在反应管中分别加入处理好的质控品和阴性对照,及时盖好封盖。
6. 做好标记(使用 ABI7500 等检测系统时,不要在反应管盖上做任何标记,以免影响荧光检测),瞬时离心后把 PCR 反应管放入仪器。
7. 打开仪器设置窗口,设置 PCR 扩增与信号收集程序。
a) 第一阶段:95 ℃,10 分钟,1 个循环;
b) 第二阶段:95 ℃,15 秒, 60℃ 30 秒,5 个循环;
c) 第三阶段:95 ℃,15 秒, 57℃ 30 秒,40 个循环;
信号收集:第三阶段 57℃ 时收集 FAM、 VIC(或 HEX)和 CY5 信号。
注! 本扩增程序仅供参考,某些 PCR 设备扩增程序可能需要作适当调整, 具体请咨询本
公司技术服务。
8. 保存文件,运行程序。
【阳性判断值】