Super-PAGE™预制胶(Bis-Tris)
Super-PAGE™Bis-Tris Gels
本产品需4℃运输;4℃可保存12个月。切勿置于0℃以下,以免凝胶发生冻裂。
货号规格
产品编号 |
预制胶浓度 |
孔数 |
每孔最大上样量 |
规格 |
LK301 |
8% |
12孔 |
35 μL |
10片装 |
LK302 |
8% |
15孔 |
25 μL |
10片装 |
LK303 |
10% |
12孔 |
35 μL |
10片装 |
LK304 |
10% |
15孔 |
25 μL |
10片装 |
LK305 |
12% |
12孔 |
35 μL |
10片装 |
LK306 |
12% |
15孔 |
25 μL |
10片装 |
LK307 |
4~12% |
12孔 |
35 μL |
10片装 |
LK308 |
4~12% |
15孔 |
25 μL |
10片装 |
LK309 |
4~20% |
12孔 |
35 μL |
10片装 |
LK310 |
4~20% |
15孔 |
25 μL |
10片装 |
产品组分
组分名称 |
数量或体积 |
预制胶 |
10片 |
Tris/MOPS/SDS电泳缓冲液(20×) |
250 mL |
产品简介
goodSuper-PAGE™预制胶(Bis-Tris)是一款安全、快捷、高性能的预制聚丙酰胺凝胶,可用于蛋白分离。本预制胶加样孔数分为12孔/15孔,最大上样量为35 μL/25 μL,详细尺寸如下:
good胶板:长×宽×高为 100×80×4.7 mm;
good凝胶:长×宽×高为 80×70×1 mm。
good此外,随胶配套的 Tris/MOPS/SDS 电泳缓冲液为中性,可大幅提高凝胶的稳定性,并可有效避免蛋白在电泳过程中发生再修饰。
产品特点
goo分辨率高——全新凝胶缓冲体系配方使蛋白电泳条带更清晰锐利,分辨率更高;
goo性能优越——针对性的设计有效降低边缘效应,轻松获得理想的电泳结果;
goo稳定性高——采用自动化灌胶生产技术,确保了产品质量的高稳定性和重复性;
goo操作简便——即开即用,无需额外配制各种缓冲液和灌胶操作,并配有Tris/MOPS/SDS电泳缓冲液;
goo电泳快速——电泳速度快,最快20 min即可完成;
goo兼容性强——兼容市场上主流的mini电泳槽,如Bio-Rad、天能、雅酶和君意东方等;
goo安全性高——无需接触有毒试剂。
使用说明
go1. 从包装袋中取出预制胶,如下图所示,将胶板底部的粉色胶带撕去;
go2. 将梳子按箭头方向从胶板中平稳地平行推出;
go3. 装胶前准备工作,以Bio-Rad或雅酶等品牌为例,请按如下步骤操作:
good这类电泳槽的U型密封条顶部有突起结构,而雅酶Super-PAGE™系列预制胶该部位是平的,因此电泳前需将具有突起结构的密封条取出后反向安装,使平滑面朝外,从而防止漏液(如下图所示)。具体操作如下:
goa. 将电泳槽中的U型密封条(如图红色部分)拉出,注意这时的密封条两端是有突起的,突起的一面为正面,无突起的为反面;
gob. 将密封条旋转180°(正面朝里,反面朝外),重新装回电泳装置中,注意把密封圈周边压实,防止发生漏液;
go4. 按下图所示方法将预制胶安装到电泳装置中;
go5. 向电泳槽的内槽中加入足量的 1×Tris/MOPS/SDS电泳缓冲液(将20×稀释成1×) ,浸没点样孔并使液面停留在其上方5 mm,接着在外槽中也加入足量的 1×Tris/MOPS/SDS电泳缓冲液 以确保适当的冷却;
good注意:① 确保外槽电泳缓冲液面低于内槽液面,不可漫过胶板;
good注意:② Tris-Glycine电泳缓冲液与本产品的Bis-Tris缓冲体系不兼容,请勿使用。
go6. 使用注射器等其它工具吸取适量 1×Tris/MOPS/SDS电泳缓冲液 ,将点样孔轻轻冲洗干净,去除气泡和残留的储存缓冲液。将上样缓冲液处理后的蛋白样品加入点样孔,启动电泳,推荐电压为140~150 V,最高不超过180 V;
go7. 电泳结束后,从胶板中取出凝胶,即可进行染胶或转膜等操作。取胶具体操作步骤如下:
good⑴ 待电泳结束后,将胶板从电泳槽中取出;
good⑵ 用撬具小心插入胶板之间的空隙,按下图所示慢慢撬动胶板上、中、下三个位置,直至胶板两侧完全分开;
good⑶ 胶板撬开之后,凝胶可能还会粘在其中一块胶板上,只需将胶板附着凝胶的一侧浸入水中,贴着水面将其倾斜轻轻提起,凝胶即可脱离,将凝胶从水中取出进行后续实验。
分离图谱(Tris/MOPS/SDS电泳缓冲液,雅酶蛋白分子量标准WJ103,蛋白条带分子量单位:kDa)
注意事项
go1. 电泳缓冲液不建议重复使用,因为电泳之后缓冲液的离子强度、缓冲能力都会发生变化,不能确保电泳效果;
go2. 电泳结束后,可以使用Tris-Glycine转膜液进行转膜。将凝胶浸泡在转膜液中10~15 min, 使其充分平衡,再进行转膜;
go3. 上样时,移液器吸头切勿过度插入点样孔,以免戳破凝胶造成漏液;
go4. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作;
go5. 本产品仅限科研使用。
常见问题
go1. 蛋白电泳示踪染料溴酚蓝扭曲、电泳时间大幅度延长:
goodd●可能是内槽电泳缓冲液泄漏导致。建议重新夹胶板,防止在电泳过程中内槽液面逐步降低;
go2. 电泳时泳道拖尾严重,点样孔样品滞留明显:
goodd●可能原因是样品处理不充分:
goodda. 裂解处理不够充分。建议降低裂解前的样品浓度,或增加裂解液的比例,使样品充分裂解;
gooddb. 上样缓冲液处理不充分。建议对裂解后的样品进行稀释后,再进行上样缓冲液处理;
go3. 蛋白条带中间凹陷,两边突起:
goodd●可能原因是样品盐离子浓度或表面活性剂浓度过高。建议稀释样品或对样品进行透析后,再进行上样缓冲液处理和上样。