His标签蛋白琼脂糖纯化树脂报价

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  • 2025年07月16日
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      182

    • 英文名

      Ni-NTA Agarose Resin

    • 保质期

      长期

    • 供应商

      北京百奥莱博科技有限公司

    • 保存条件

      4℃

    • 规格

      10ml|50ml|100ml

    特别提示:包括His标签蛋白琼脂糖纯化树脂在内,本公司的所有产品仅可用于科研实验,严禁用于临床医疗及其他非科研用途!


    产品名称:His标签蛋白琼脂糖纯化树脂
    英文名称:Ni-NTA Agarose Resin
    产品货号:SY0392
    产品规格:10ml|50ml|100ml

    Ni-NTA Agarose Resin以高度交联的4%琼脂糖凝胶为基质,通过化学方法偶联四配位的氮川三乙酸(NTA)为配体,螯合镍离子(Ni2+)后,形成非常稳定的八面体结构,镍离子处于八面体的中心,这样的结构可保护镍离子免受小分子的进攻,与Ni-IDA树脂相比,更加稳定,可以耐受一定浓度的还原剂、变性剂或耦合剂等苛刻条件。已经成为实验室纯化His标签蛋白不可获取的树脂之一。

    基质(Matrix):高度交联的4%琼脂糖凝胶
    孔径(Bead size):45-165µm
    载量(Capacity):>40mg 6×His-tagged protein/ml 基质
    耐压(Tolerance Pressuremax):0.1MPa, 1bar
    储存缓冲液:含20%乙醇的1×PBS
    储存条件:4℃,有效期2年。


    使用方法

    (一)纯化流程

    1 缓冲液的准备
    缓冲液使用原理:低咪唑上样,高咪唑洗脱,或者高pH上样,低pH洗脱。Buffer 在使用前最好用0.22µm或0.45µm滤膜过滤除菌。可溶性组氨酸标签蛋白纯化所需配方详见附表1。包涵体组氨酸标签蛋白纯化所需缓冲液及配方详见附表2。

    2 样品准备
    2.1 细菌表达的蛋白(本说明以细菌表达的蛋白纯化为例)
    1)挑取单菌落到含有适合抗性的LB培养基中,根据载体说明加入相应的诱导剂诱导相应的时间。
    2)表达结束后,将培养液转至离心瓶,7000rpm,离心15min,收集菌体,然后加入1/10体积的裂解液(Lysis buffer)和PMSF(PMSF在破碎前加入,其终浓度为1mM),同时也可加入其他蛋白酶抑制剂,但不能影响目的蛋白与树脂的结合。
    3)之后加入溶菌酶,使其工作浓度为1mg/ml。【注】:如果表达的宿主细胞内含pLysS或pLysE,可以不加入溶菌酶。
    4)将菌体沉淀悬浮起来(如果菌液浓度高,可考虑加入10µg/ml RNase A和5µg/ml DNase I),混匀,置于冰上超声破碎细胞,至菌液基本保持澄清。
    5)收集上述澄清蛋白液,10000rpm,4℃离心20-30min。取上清0.22µm或0.45µm滤膜过滤后置于冰上备用或-20℃保存。
    2.2 酵母、昆虫和哺乳细胞分泌表达的可溶性蛋白
    将细胞培养液转移至离心瓶,5000rpm离心10min,收集上清。如上清中不含EDTA、组氨酸和还原剂等,即可直接上柱纯化;如含有EDTA、组氨酸和还原剂等物质,则需用1×PBS 4℃下透析后方可上柱。
    【注】:对于大量体积的上清,需加入硫酸铵进行沉淀浓缩,之后经1×PBS 4℃下透析后上柱。
    2.3 包涵体蛋白纯化(以细菌为例)
    1)将培养液转移至离心瓶,7000rpm,离心15min,收集菌体去上清。
    2)按照菌体:裂解液=1:10(w/v)的比例将菌体充分悬浮,混匀,冰浴超声破碎。
    3)将破碎液转移至离心管,10000rpm,4℃离心20-30min,去上清。可重复步骤2)和3)一次。
    4)按照菌体:裂解液(含8M尿素)=1:10(w/v)的比例将包涵体充分悬浮。
    5)变性条件下纯化His标签蛋白纯化。

    3样品纯化

    1)装柱:将Ni-NTA Agarose Resin借助重力的作用装入合适的纯化柱中。
    2)清洗:3-5倍柱体积去离子水冲洗色谱柱。
    3)平衡:至少5倍柱体积的Lysis Buffer 平衡色谱柱。
    4)上样:注意控制加样速度,确保目的蛋白与Ni2+充分接触,以提高纯化得率。
    【注】:注意收集流出液,用于后续SDS-PAGE检测蛋白的结合情况。
    5)平衡/洗杂:Wash Buffer 平衡柱子,直到紫外吸收达到一个稳定的基线(一般至少10-15个柱体积)。注意收集流出液。
    【注】:在样品和结合缓冲液中加入低浓度咪唑可以提高样品纯度。
    6)洗脱:使用5-10倍柱体积Elution Buffer洗脱,收集洗脱液即目的蛋白溶液。
    7)清洗:依次用3倍柱体积的Lysis Buffer和5倍柱体积的去离子水清洗树脂。
    【注】:建议在清洗之前用更高浓度咪唑(如500mM)彻底清洗纯化柱上结合的杂蛋白。
    8)保存:5倍柱体积的20%乙醇平衡树脂,最后将树脂保存在20%乙醇的1×PBS中,置于4℃保存。

    4 SDS-PAGE检测
    将纯化过程中得到的样品(包括原始样品、流出组分、洗杂及洗脱组分等)利用SDS-PAGE进行检测,判定其纯化效果。

    (二)在位清洗
    当填料使用过程中发现反压过高(>0.5Mpa)或者填料上面出现明显的污染时,需对其进行在位清洗(Cleaning-in-Place,CIP)。在位清洗时,先把Ni2+脱掉,清洗结束后,将填料保存在20%乙醇中,后者重新挂Ni后再保存在20%乙醇中。建议按照下面操作去除填料上残留的污染物,如沉淀蛋白、疏水蛋白和脂蛋白等。

    1 去除强疏水结合的蛋白,脂蛋白和脂类
    使用30%异bǐng醇清洗5-10个柱体积,接触时间为15-20min可以去除此类污染物。之后再用去离子水清洗10倍柱体积。也可以选择使用含有去污剂的酸性或者碱性溶液清洗填料2倍柱体积。例如含有0.1-0.5%非离子去污剂的0.1M醋suān溶液,接触时间为1-2h。去污剂处理后,需用70%的乙醇清洗5倍柱体积,彻底去除去污剂。最后利用去离子水清洗10倍柱体积。

    2 去除离子作用结合的蛋白
    使用1.5M NaCl 溶液接触10-15min,之后用去离子水清洗10倍柱体积。

    (三)填料再生

    当填料使用过程中发现反压过高,填料上面出现明显的污染,或填料载量明显变低时,需要对其进行镍离子剥离及重新挂镍处理,即填料再生。按照下面操作流程进行:

    1)使用0.2M 醋suān溶液(含6M GuHCl)清洗2倍柱体积;
    2)去离子水清洗5倍柱体积;
    3)2%SDS清洗3倍柱体积;
    4)去离子水清洗5倍柱体积;
    5)乙醇清洗5倍柱体积;
    6)去离子水清洗5倍柱体积;
    7)100mM EDTA(pH 8.0)清洗5倍柱体积;
    8)去离子水清洗5倍柱体积;
    9)100mM NiSO4清洗5倍柱体积;
    10)去离子水清洗10倍柱体积。

    填料再生后,可立即使用,也可保存在20%乙醇中,置于4℃备用。


    附表1 可溶性His标签蛋白纯化所需缓冲液及配方
    缓冲液名称 配方 配制1L溶液所需各种试剂量
    Lysis Buffer (pH8.0) 50mM NaH2PO4
    300mM NaCl
    10 mM imidazole
    NaOH调pH至8.0, 0.22µm或0.45µm过滤除菌
    NaH2PO4 ·2H2O    7.8g
    NaCl             17.54g
    Imidazole         0.68g
    Wash Buffer (pH8.0) 50mM NaH2PO4
    300mM NaCl
    20 mM imidazole
    NaOH调pH至8.0, 0.22µm或0.45µm过滤除菌
    NaH2PO4 ·2H2O    7.8g
    NaCl             17.54g
    Imidazole         1.36g
    Elution Buffer(pH8.0) 50mM NaH2PO4
    300mM NaCl
    250 mM imidazole
    NaOH调pH至8.0, 0.22µm或0.45µm过滤除菌
    NaH2PO4 ·2H2O    7.8g
    NaCl             17.54g
    Imidazole         17.0g


    附表2 包涵体His标签蛋白纯化所需缓冲液及配方
    缓冲液名称 配方 配制1L溶液所需各种试剂量
    Lysis Buffer (pH8.0) 8M Urea
    100mM NaH2PO4
    100 mM Tris·HCl
    盐酸溶液调pH至8.0, 0.22µm或0.45µm过滤除菌
    Urea             480.5g
    NaH2PO4 ·2H2O    15.6g
    Tris              15.76g
    Wash Buffer (pH6.3) 8M Urea
    100mM NaH2PO4
    100 mM Tris·HCl
    盐酸溶液调pH至6.3, 0.22µm或0.45µm过滤除菌
    Urea             480.5g
    NaH2PO4 ·2H2O  15.6g
    Tris              15.76g
    Elution Buffer(pH4.50) 8M Urea
    100mM NaH2PO4
    100 mM Tris·HCl
    盐酸溶液调pH至4.5, 0.22µm或0.45µm过滤除菌
    Urea             480.5g
    NaH2PO4 ·2H2O    15.6g
    Tris             15.76g


    附表3 Ni-NTA Agarose Resin试剂耐受情况
    试剂种类 浓度
    还原剂 5mM DTE
    0.5-1 mM DTT
    20mM β-mercaptoethanol
    5mM TCEP
    10mM reduced glutathione
    变性剂 8M urea
    6M Gua-HCl
    去污剂 2% TritonTM X-100(nonionic)
    2% TweenTM20(nonionic)
    2% NP-40(nonionic)
    2% Cholate (anionic)
    1% CHAPS (zwitterionic)
    其他类 500mM imidazole
    20% ethanol
    50% glycerol
    100mM Na2SO4
    1.5M NaCl
    1mM EDTA
    60mM citrate
    缓冲液 50mM sodium phosphate, pH7.4
    100mM Tris-HCl, pH7.4
    100mM Tris-acetate, pH7.4
    100mM HEPES, pH7.4
    100mM MOPS, pH7.4
    100mM sodium acetate, pH7.4


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