适用于从动物组织、培养细胞、血液、细菌、真菌和植物中纯化总 RNA。仅用于科研,不得用于临床诊断.
【产品介绍】
Trizol 是即用型的试剂,可用于从组织和细胞中纯化总 RNA。这是一种含酚和异硫氰酸胍的单相溶液,便于裂解组织和细胞,抑制 RNA 酶以保持 RNA 完整性。
Trizol 总 RNA 纯化试剂盒 I结合了 Trizol 试剂盒硅胶膜技术,在 20 - 40 分钟内可从动物组织、培养细胞、血液和植物样本中分离 RNA,与传统的 Trizol 沉淀法相比,残留的盐分和蛋白更少。核酸纯化柱可方便结合、洗涤和洗脱,因此可同时操作多个样本。与传统的 RNA 分离技术不同,该柱无需异丙醇沉淀和乙醇洗涤等。样本被 Trizol 试剂裂解。加入氯仿后,匀浆物通过离心分为水相和有机相。RNA 分离至上层水相,而 DNA 分离至中层,蛋白分离至下层有机相。含 RNA 的水相加入乙醇后转移至核酸纯化柱,RNA 结合到硅胶膜上,溶解的蛋白与 PCR 抑制物则被过滤除去。RNA 经 Buffer WA 和 Buffer WBR 洗涤液洗涤后,用 Nase-Free Water 洗脱得到纯化 RNA。洗脱的 RNA 长度在 200 bp 和 10 kb 之间,其中以 tRNA 为主。纯化的 RNA 可直接用于 RT-PCR、Northern blot、Dot blot、体外翻译、RNA 酶保护分析等各种分子生物学实验,或保存于-70℃待后续使用。
【温馨提醒】
1. 本产品用于分子生物学实验,仅用于科学研究,非诊断试剂,不能用于临床诊断。
2. 请在本产品标记的有效期内使用。
3. 本产品的试剂不能与其他批号的试剂或其他来源的试剂混合使用。
【提供的材料和贮存】
组分 | 编号 | -050 | -250 |
RNA核酸纯化柱 | MC02 | 50 | 250 |
2ml离心管 | MCT01 | 50 | 250 |
Trizol试剂 | MR0602 | 55ml | 55ml×5 |
缓冲液WA(浓缩液) | MR0516 | 12ml | 12ml×5 |
缓冲液WBR(浓缩液) | MR0518 | 9.5ml | 9.5ml×5 |
无RNA酶水 | MR0501 | 2ml×3 | 2ml×15 |
研杵 | MC05 | 50 | 250 |
注:Trizol试剂应保存于2 - 8℃。其它所有试剂可在室温保存2年,性能无明显变化;如保存于2 - 8℃,则效期更久。在低温的运输或储存条件下,缓冲液中可能会出现沉淀,可在 70℃加热并轻轻摇晃使之溶解。
【未提供的材料设备】
1. 乙醇 (96 - 100 %)
2. 70 %乙醇 (用无 RNA 酶水配制)
3. 氯仿
4. 1.5 ml 离心管 (无菌,无 RNA 酶)
5. 吸头 (无菌,无 RNA 酶)
6. 微量离心机 (配 1.5 ml 和 2 ml 离心管的转子)
7. 振荡器
8. 液氮和研钵 (可能需要)
【快速流程示意图】

【试剂盒应用范围】
样本类型
Trizol总RNA纯化试剂盒I可从人、动物、植物、细菌和真菌来源的组织和细胞样本中分离总RNA。关于样本类型和起始量请参考下表。
样本类型 | 样本起始量 |
动物组织 (易于匀浆的组织如肝脏、 脑等) | 10 - 100 mg |
动物组织 (不易匀浆的组织如皮肤、 骨骼等) | 100 - 200 mg |
含有核红细胞的全血 | 200 μl |
含无核红细胞的全血 | 100 - 500 μl |
培养细胞 | 5 - 10 ×106 |
真菌 | 10 - 100 mg |
细菌 | 10 - 100 mg |
植物 | 10 - 100 mg |
【实验流程】
[实验前准备]
根据标签所示在 Buffer WA 和 Buffer WBR 中加入乙醇,混匀并在标签的方框中打勾作好“乙醇已加”的标记。
使用前将所有缓冲液混匀。
[操作步骤]
从全血中纯化总
RNA无核红细胞的抗凝血、唾液或骨髓样本,请按步骤 1a 操作;
有核红细胞的抗凝血样本,请按步骤 1b 操作。
1a. 在 2 ml 离心管 (未提供) 中加入 1.5 ml 红细胞裂解液,再加入 300 µl 抗凝血,盖紧管盖,上下颠倒轻柔混匀,室温孵育 5 分钟,3,000 rpm 离心 5 分钟。弃去上清,加入 1 ml Trizol 试剂,吹打打散和裂解细胞沉淀。
注意:红细胞裂解液未提供,可从联科生物单独订购,Cat No. MR0504。可根据抗凝血体积,按比例增减红细胞裂解液。
1b. 在 2 ml 离心管 (未提供) 中加入 200 µl 抗凝血,随后加入 1 ml Trizol 试剂,吹打裂解细胞。
2. 加入 200 µl 氯仿,盖紧管盖,用力摇晃 15 秒,12,000 rpm 离心 15 分钟。
3. 吸取 600 µl 上层水相转移至 1.5 ml 离心管中 (未提供),加入 600 µl 70%乙醇,吹打混匀。
4. 将核酸纯化柱置于提供的 2 ml 离心管中,将步骤 3 中的 600 µl 混合物加入至核酸纯化柱。盖紧管盖,12,000 rpm 离心 30 秒。
5. 弃去滤液,将核酸纯化柱置回到 2 ml 离心管中,将余下的混合物加入核酸纯化柱中。盖紧管盖,12,000 rpm 离心 30 秒。
6. 弃去滤液,将核酸纯化柱放回至 2 ml 离心管,加入 500 μl 含乙醇的 Buffer WA,盖紧管盖,12,000 rpm 离心 30 秒。
注意:使用前,请确认 Buffer WA 中已加入乙醇。
7. 弃去滤液,将核酸纯化柱放回至 2 ml 离心管,加入 600 μl 含乙醇的 Buffer WBR,盖紧管盖,12,000 rpm 离心 30 秒。
注意:使用前,请确认 Buffer WBR 中已加入乙醇。
8. 弃去滤液,将核酸纯化柱置回到 2 ml 离心管中,14,000 rpm 离心 1 分钟。
注意:如果离心机的离心速度达不到 14,000 rpm,则用最高速离心 2 分钟。请勿省略该步骤,否则可能因洗脱物中含有残留的乙醇,对下游实验造成影响。
9. 弃去滤液和离心管,将核酸纯化柱置于一个洁净的不含 RNA 酶的 1.5 ml 离心管中 (未提供),在纯化柱的膜中央加入 50 µl RNase-Free Water,盖紧管盖,室温静置 1 分钟,12,000 rpm 离心 30 秒。
10. 弃纯化柱,洗脱的 RNA 可立即用于分子生物学实验;或者将 RNA 储存于-70℃备用。
注意:大部分 DNA 已在 Trizol 萃取阶段被去除。如果在一些敏感的下游实验中必须去除残留的微量 DNA,请选择“Trizol 总 RNA 纯化试剂盒 II” (Cat No. MK020002)。