产品封面图
文献支持

HCC827人非小细胞肺癌传代细胞活性强|送STR图谱

收藏
  • ¥850 - 2150
  • 冠导生物
  • HCC827人非小细胞肺癌传代细胞活性强|送STR图谱
  • 美国、德国、欧洲等地
  • 2025年07月14日
    avatar
  • 企业认证

    点击 QQ 联系

    • 详细信息
    • 文献和实验
    • 技术资料
    • 品系

      详见细胞说明资料

    • 细胞类型

      详见细胞说明资料

    • 肿瘤类型

      详见细胞说明资料

    • 供应商

      上海冠导生物工程有限公司

    • 库存

      ≥100瓶

    • 生长状态

      详见细胞说明资料

    • 年限

      详见细胞说明资料

    • 运输方式

      常温运输【复苏细胞】或干冰运输【冻存细胞】

    • 器官来源

      详见细胞说明资料

    • 是否是肿瘤细胞

      详见细胞说明资料

    • 细胞形态

      详见细胞说明资料

    • 免疫类型

      详见细胞说明资料

    • 物种来源

      详见细胞说明资料

    • 相关疾病

      详见细胞说明资料

    • 组织来源

      详见细胞说明资料

    • 英文名

      HCC827人非小细胞肺癌传代细胞活性强|送STR图谱

    • 规格

      1*10(6)Cellls/瓶

    "HCC827人非小细胞肺癌传代细胞活性强|送STR图谱
    传代方法:1:2-1:4(首次传代建议1:2)
    生长特性:贴壁生长
    换液频率:每周2-3次
    背景资料:这株细胞建于1994年三月。这株肺腺癌在EGFR酪激酶区域有一个获得性突变(E746-A750缺失)。患者在25岁到26岁时每个月抽1包烟。在诊断前12年不再抽烟。
    DLD-1 Cells;背景说明:DLD-1是1977-1979年间D.L.Dexter和同事分离的两株结直肠腺癌细胞株中的一株。在ATCC和其它地方进行的DNAfingerprinting和染色体组型分析表明这株细胞与HCT-15(CCL-225)相似,说明这两者是来自同一个人的不同克隆。他们的遗传起源可通过DNAfingerprinting证实,但染色体组型分析显示它们缺乏染色体标记一致改变或数目上一致改变。细胞的CSAp阴性(CSAp-)。DLD-1细胞的p53抗原表达呈阳性(p53抗原产生了一个C->;传代方法:消化5分钟。1:2。4-5天长满。;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:HCC1419 Cells、BGC-823 Cells、LS1034 Cells
    HDQ-P1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:HCT.116 Cells、A-673 Cells、HIEC Cells
    BEL/FU Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:KOSC-2 cl3-43 Cells、HBL1 Cells、RT-BM Cells
    体内细胞培养及其操作步骤:【瘤细胞悬接种】1)无菌选取生长良HAO(有光泽,淡红色)瘤组织或对数生长期培养瘤细胞;2)在PBS中将瘤组织剪碎后用匀浆器研磨,经80~100目筛网过滤成细胞悬;3)培养细胞应用PBS洗两遍;4)计数并调整细胞浓度至107~108/ml;5)常规消毒后,于接种部位(通常为背部或腋窝腹股沟皮下)用医用注射器皮下潜行一段后注入细胞悬(0.1ml/部位,>106细胞)。初次接种成功率低,细胞数尽可能多一些;6)次日注意观察动物一般情况。初次接种一般有一段较长的潜伏期,以后随着传代潜伏期逐渐缩短,Zui后固定为一个相对稳定的时间。【腹水瘤的建立与腹水瘤的接种】将实体瘤细胞直接种于小鼠腹腔、腹壁或其他部位,引起腹水,腹水中含有瘤细胞,将这种腹水反复传代,即可成为腹水瘤。初次传代时,腹水常呈血性(含大量红细胞),反复传代后腹水逐渐变成乳白色。腹水瘤的接种过程如下。1)将冻存或培养的腹水瘤细胞离心和洗涤,进行细胞计数;2)消毒动物,左下腹穿刺接种106腹水瘤细胞;3)接种腹水瘤细胞后约7~12d,待小鼠腹部明显膨大。用碘酒棉球消毒小鼠腹部,用9号针头抽取腹水,也可行腹部解剖后,用滴管吸取。每只小鼠可抽3~5ml;4)抽取的腹水经3000rpm离心15min,收集上清,分装冻存备用。
    HCC827人非小细胞肺癌传代细胞活性强|送STR图谱
    ┈订┈购┈热┈线:1┈5┈8┈0┈0┈5┈7┈6┈8┈6┈7【微信同号】┈Q┈Q:3┈3┈0┈7┈2┈0┈4┈2┈7┈1;
    产品包装形式:复苏细胞:T25培养瓶(一瓶)或冻存细胞:1ml冻存管(两支)
    来源说明:细胞主要来源ATCC、DSMZ等细胞库
    物种来源:Human\Mouse\Rat\Others
    MAD109 Cells;背景说明:肺癌;BALB/c;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:Karpas422 Cells、S16 Cells、Hs-940 Cells
    NCIH1355 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:每周换液2次。;生长特性:悬浮生长;形态特性:详见产品说明;相关产品有:HMSC Cells、D341 Cells、T. T Cells
    SkChA-1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:CMT93 Cells、Human ErythroLeukemia Cells、H-211 Cells
    H-295 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:RDES-1 Cells、LOU-NH91 Cells、T-cell Acute Lymphoblastic Leukemia-1 Cells
    细胞冻存的步骤:1)选择处于对数生长期的细胞,在冻存前一天ZuiHAO换。将多个培养瓶中的细胞培养去掉,用0.25% 胰蛋白酶消化。适时去掉胰蛋白酶,加入少量新培养。用吸管吸取培养反复吹打瓶壁上的细胞,使其成为均匀分散的细胞悬。悬浮生产细胞则不要消化处理。然后将细胞收集于离心管中离心(1000r/min,10分钟);2)去上清,加入含20%小牛血清的完全培养基,于4℃预冷15分钟后,逐滴加入已无菌的DMSO或甘油,用吸管轻轻吹打使细胞均匀,细胞浓度为5×106~1×107/mL之间。(冻存培养的配置是不是一定要用小牛血清呢?答案是不一定的,具体要看培养的细胞类型来选择;3)将分装上述细胞悬于2ml冻存管中,每管0.25ml。冻存管要将盖子盖紧,并标记HAO细胞名称和冻存日期,同时作HAO登记(日期、细胞种类及代次、冻存支数);4)将装HAO细胞的冻存管放到冻存盒中,-80℃冰箱过夜。;如果有程序降温器(放在-80℃冰箱过夜,放入罐)ZuiHAO;或者可以在4℃,2h;然后转到-20℃,2h;-80℃,2h;放入罐;5)细胞冻存在中可以长期保存,但为妥善起见,冻存半年后,ZuiHAO取出一只冻存管细胞复苏培养,观察生长情况,然后再继续冻存。
    ┈订┈购┈热┈线:1┈5┈8┈0┈0┈5┈7┈6┈8┈6┈7【微信同号】┈Q┈Q:3┈3┈0┈7┈2┈0┈4┈2┈7┈1;
    HCC827人非小细胞肺癌传代细胞活性强|送STR图谱
    形态特性:上皮细胞样
    关于细胞株是否都能一直传代,答案是否定的。细胞系分为有限细胞系与连续细胞系两类。有限细胞系就像一位有着既定行程的行者,其传代之旅存在明确的终点。以正常的人体肝细胞系为例,在体外培养时,它大约能传代20-30次。随着传代次数的递增,细胞内部仿佛一台精密仪器的零件逐渐磨损老化。端粒酶活性降低,端粒不断缩短,染色体结构开始不稳定,基因表达也出现异常。同时,细胞的代谢速率减缓,对营养物质的摄取和利用效率大打折扣,有害物质的积累却日益增多,最终导致细胞停止分裂,走向生命的尽头。而连续细胞系则像是拥有无限活力的长跑健将,具有较强的传代能力。如Hela细胞系,自1951年从Henrietta Lacks女士的宫颈癌组织中分离出来后,便在全球生物实验室中“大放异彩”,至今已传代无数次。它能持续分裂得益于其特殊的遗传变异,使其染色体端粒能够维持稳定长度,并且细胞内的一些关键信号通路持续激活,促进细胞增殖。但这并不意味着它的传代毫无风险与限制。在漫长的传代过程中,它可能会发生新的基因突变、染色体易位等变异事件,从而改变细胞的生物学特性,如细胞形态、生长速度、对药物的敏感性等。
    Hs821T Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;每周换液2-3次;生长特性:贴壁生长;形态特性:成纤维细胞;相关产品有:ATC241 Cells、HCC2279 Cells、MZ-CRC-1 Cells
    BL6 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:3-4天换液1次。;生长特性:悬浮生长;形态特性:淋巴母细胞样 ;相关产品有:UO-31 Cells、MC-38 Cells、NIH:OVCAR-8 Cells
    MV-4:11 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:SUM-159-PT Cells、FHs74 Int Cells、H-1755 Cells
    PLC Cells;背景说明:该细胞系分泌乙肝病毒表面抗原(HBsAg)。 此细胞系原先被支原体污染,后用BM-cycline去除支原体;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:Hs739T Cells、RPMI-1788 Cells、OVCA-432 Cells
    LS513 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:3—1:4传代,每周换液2次;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:OCI Ly1 Cells、A-10 Cells、NCI-H102 Cells
    H1793 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:3-1:6传代 ;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞;相关产品有:TGW-nu-1 Cells、SVEC 4-10 Cells、SK Mel 1 Cells
    Mahlavu Cells;背景说明:肝癌;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:Sp2/0-Ag14 Cells、MB468 Cells、HO-1-N-1 Cells
    CEM-CCRF (CAMR) Cells;背景说明:G.E. Foley 等人建立了类淋巴母细胞细胞株CCRF-CEM。 细胞是1964年11月从一位四岁白人女性急性淋巴细胞白血病患者的外周血白血球衣中得到。此细胞系从香港收集而来。;传代方法:1:2传代。3天内可长满。;生长特性:悬浮生长;形态特性:淋巴母细胞样;相关产品有:H-358 Cells、SKM-1 Cells、Epstein-Barr-3 Cells
    JVM3 Cells;背景说明:慢性髓白血病;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:悬浮;形态特性:详见产品说明;相关产品有:NCI-SNU-761 Cells、MDA-MB-231 Cells、SH-SY5Y Cells
    10P2 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    Abcam HeLa AK1 KO Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    AG14531 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    BayGenomics ES cell line RRD195 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    BayGenomics ES cell line XF176 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    ┈订┈购┈热┈线:1┈5┈8┈0┈0┈5┈7┈6┈8┈6┈7【微信同号】┈Q┈Q:3┈3┈0┈7┈2┈0┈4┈2┈7┈1;
    BY00683 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    CTGUi001-A Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    DA04873 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    FU-02 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    MDAMB435 Cells;背景说明:乳腺癌;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:NCIH647 Cells、PTK1 Cells、UACC 812 Cells
    PA12 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:R-1059-D Cells、Tadarida brasiliensis 1 lung Cells、EMT-6 Cells
    MH-S Cells;背景说明:巨噬细胞;雄性;SV40转化;BALB/cJ;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:悬浮;形态特性:详见产品说明;相关产品有:Stanford University-Diffuse Histiocytic Lymphoma-1 Cells、PC12(高分化) Cells、KE39 Cells
    BT-483 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代,2—3天换液一次;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:C8161 Cells、JROECL33 Cells、U-87-MG Cells
    SW 579 Cells;背景说明:在裸鼠中成瘤(产生三级恶性纺锤状巨细胞瘤)。 ;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:ATN-1 Cells、WM 115 Cells、EPC Cells
    C-32 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:4传代,2天换液1次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:详见产品说明;相关产品有:EST81 Cells、Cloudman M3 Cells、UK Pan-1 Cells
    H2172 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:3-1:6传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:详见产品说明;相关产品有:alphaTC clone 6 Cells、Med 341 Cells、MKN74 Cells
    BC-009 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:MCF-7 Cells、L-540 Cells、Pt-K1 Cells
    H-2196 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:3-1:6传代;每周换液2次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:HTori 3 Cells、PANC3.27 Cells、C1R Cells
    A-1847 Cells;背景说明:卵巢癌;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:SL-29 Cells、HuTu-80 Cells、6-T CEM Cells
    HS-940-T Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代,2-3天换液1次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:成纤维细胞;相关产品有:Hs940-T Cells、WILL-2 Cells、HSF2 Cells
    SV40 MES 13 Cells;背景说明:肾小球系膜;SV40转化;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:DITNC1 Cells、OCI-Ly 10 Cells、HCC-95 Cells
    D283MED Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:每周换液2-3次。;生长特性:悬浮细胞的多细胞聚集体,和一些贴壁 Cells;形态特性:上皮细胞;相关产品有:Lu99A Cells、HEK293S Cells、DoTc2 Cells
    12H11 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    Wayne State University-Head and Neck 13 Cells;背景说明:舌鳞癌;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:NU-GC-4 Cells、ND7/23 Cells、H1792 Cells
    HCC827人非小细胞肺癌传代细胞活性强|送STR图谱
    CD-18 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:详见产品说明;相关产品有:B16 melanoma F10 Cells、NCIH1573 Cells、RAEC Cells
    MDA231-LM2-4175 Cells;背景说明:乳腺癌;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:CSQT-2 Cells、Leukemia L1210 Cells、HCT-FET Cells
    Farage Original Line Cells;背景说明:Farage细胞源于一名患有弥漫性大B细胞淋巴瘤(DLBCL)白人女性的活检淋巴组织,由HBen-Bassat建系。经IL-4处理,该细胞CD21,CD22,CD54和CD58表达上调,而CD21,CD22,andCD38表达下调。;传代方法:1:3传代,2-3天传一代;生长特性:悬浮生长;形态特性:淋巴母细胞样;相关产品有:IOSE-Van Cells、HO1N1 Cells、HEL 299 Cells
    Mouse podocyte Cells;背景说明:肾;足 Cells;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:PANC 813 Cells、MEC-1 Cells、L5178Y-R Cells
    N9 Cells;背景说明:小胶质细胞;雄性;CD-1;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:半贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:KB Cells、KU-812-F Cells、HT144mel Cells
    SNU-C2A Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:每周两次换液;生长特性:松散附着、多单元的聚合;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:AAV293 Cells、SNU-354 Cells、SNU-5 Cells
    H1819 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:HEL Cells、NCI-H446 Cells、NCI-H1395 Cells
    GM28322 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    HAP1 PDCD4 (-) 2 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    MT-2 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;生长特性:悬浮生长;形态特性:淋巴母细胞;相关产品有:Stanford University-Diffuse Histiocytic Lymphoma-16 Cells、SKNO-1 Cells、RPTEC TERT1 Cells
    SK RC 20 Cells;背景说明:肾癌;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:OV1-P Cells、3T3-J2 Cells、P3X63Ag8 Cells
    NCI-H841 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:3—1:5传代,;生长特性:混合型生长;形态特性:详见产品说明;相关产品有:BNL.1ME A.7R.1 Cells、NOZAWA Cells、Colo16 Cells
    SNU1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:2-3天换液1次。;生长特性:悬浮聚集;形态特性:上皮细胞;相关产品有:K-1735 Cells、SNU449 Cells、MM-1S Cells
    HR8348 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:DHL10 Cells、LS174T Cells、DMS153 Cells
    OCI AML5 Cells;背景说明:急性髓系白血病细胞;男性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:悬浮;形态特性:详见产品说明;相关产品有:H-1693 Cells、Hs-688A-T Cells、X63Ag8.653 Cells
    HL60 Cells;背景说明:该细胞由CollinsSJ从一位患有急性早幼粒细胞性白血病的36岁白人女性的外周血中分离建立;可自发分化,或在盐、次黄嘌呤、佛波醇肉豆蔻酸(PMA,TPA)、DMSO(1%to1.5%)、D和视黄酸的刺激下发生分化;PMA刺激后可分泌TNF-α。该细胞具有吞噬活性和趋化反应,癌基因myc阳性,表达补体受体和FcR。;传代方法:维持细胞浓度在1×105-1×106/ml,每2-3天换液1次。;生长特性:悬浮生长;形态特性:髓母细胞样;相关产品有:MT-3 [Human leukocytes] Cells、Farage Cells、MDA MB 436 Cells
    UMC11 Cells;背景说明:肺肿瘤;男性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:U-373-MG Cells、KRC/Y Cells、NTERA-2 cl.D1 Cells
    HS480 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    KOLF2.1J PARK7 L166P SNV/SNV Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    Mo06 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    NUNK1 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    RG-262 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    Ubigene NIT-1 Fto KO Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    YSCHi003-A Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    HG01523 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    OAW-42 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:SKNDZ Cells、Granta519 Cells、NCIH2085 Cells
    C3H/10T1/2 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:JIMT-1 Cells、SF763 Cells、RTMC Cells
    MESSA-DX5 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:8传代;每周2-3次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:成纤维细胞样 ;相关产品有:GLC-15 Cells、PLA801D Cells、OCI-AML2 Cells
    FC33 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:MonoMac1 Cells、HEK-A Cells、AM38 Cells
    A2780/CP Cells;背景说明:卵巢癌;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:HGC-27 Cells、Hs-746T Cells、SNU-601 Cells
    National Medical Center-Glioma 1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞;相关产品有:HBE 135-E6E7 Cells、HSCT6 Cells、KYSE 410 Cells
    H209 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:4传代;每周换液2次。;生长特性:悬浮生长,有少数细胞疏松贴壁;形态特性:上皮样;相关产品有:HN6 Cells、SKHEP1 Cells、SPCA1 Cells
    OAC-P4C Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:Hut292 Cells、Karpas 422 Cells、AG06814-M Cells
    MCF-7B Cells;背景说明:浸润性导管癌;胸腔积液转移;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:Jurkat E6.1 Cells、TFK-1 Cells、NCIH1703 Cells
    VMM-5A Cells;背景说明:黑色素瘤;神经节转移;男性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:CC-LP-I Cells、AtT20 Cells、PL-9 Cells
    NB9 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:10 1:50每2 - 3周;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:成神经细胞;相关产品有:WM451 Cells、A-9 Cells、MPC11 Cells
    NCCIT Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:4—1:8传代,每周换液2—3次;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞;相关产品有:L-929 Cells、Ca Ski Cells、NPC-TW01 Cells
    CRFK Cells;背景说明:肾;自发永生;女性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:TCC-PAN2 Cells、JVM3 Cells、NCI.H522 Cells
    PLC/PRF5 Cells;背景说明:该细胞系分泌乙肝病毒表面抗原(HBsAg)。 此细胞系原先被支原体污染,后用BM-cycline去除支原体;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:KYSE 510 Cells、SUPB15 Cells、LC1sq Cells
    PZ-HPV-7 Cells;背景说明:前列腺上皮细胞;HPV18转化;男性;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:NCI-SNU-216 Cells、174xCEM.T2 Cells、HEK-293FT Cells
    STIP-3 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    HCEC-12 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:GM-637 Cells、HSF2 Cells、Normal Rat Kidney-49F Cells
    NCI-H2030 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:3-1:4传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞样;相关产品有:TK+/- (clone 3.7.2C) Cells、H-2591 Cells、BIU-87/Adr Cells
    GT39 Cells;背景说明:胃癌;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:NCI.H460 Cells、RPMI8226 Cells、HCC1588 Cells
    JeKo-1 Cells;背景说明:一位套细胞淋巴瘤患者的巨细胞变种显示白血病转变,从其外周血单核细胞出发建立了MCL细胞株JeKo-1。 JeKo-1细胞EB病毒阴性,并表达一种B细胞表型的IgM。 细胞过表达cyclin D1, Bcl-2, c-Myc 及 Rb 蛋白。 Bcl-1/J(H)基因重排得到了PCR证实。 JeKo-1细胞在SCID小鼠中高成瘤。 [PubMed: 9753063];传代方法:1:2传代。3天内可长满。;生长特性:悬浮生长;形态特性:淋巴母细胞样;相关产品有:UM2 Cells、BCP-1 Cells、H1734 Cells
    COLO206F Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:TC7 Cells、INS1 Cells、MonoMac6 Cells
    ACC3 Cells;背景说明:Acc-3细胞源自一位49岁男性的腺样囊性癌。能表达角蛋白。;传代方法:消化3-5分钟。1:2。3天内可长满。;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:SU.86 Cells、Detroit562 Cells、OC-316 Cells
    NCIH2052 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:3-1:6传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮细胞;相关产品有:G361mel Cells、A10 Cells、Radiation Effects Research Foundation-Lung Cancer-MS Cells
    GES1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:详见产品说明;相关产品有:HEK293FT Cells、Hs832.Tc Cells、MG-HU-3 Cells
    ┈订┈购┈热┈线:1┈5┈8┈0┈0┈5┈7┈6┈8┈6┈7【微信同号】┈Q┈Q:3┈3┈0┈7┈2┈0┈4┈2┈7┈1;
    SKHEP-1 Cells;背景说明:SK-HEP-1细胞系已被鉴定为内皮来源。该细胞系为异倍体女性人(XX),染色体在亚三倍体范围内。在裸鼠中,它能形成与肝癌相一致的大细胞癌;传代方法:1:3传代,2-3天换液一次;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:SNT-8 Cells、NCI-H1436 Cells、Human Microvascular Endothelial Cell line-1 Cells
    G-292 clone A141B1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:EB2 Cells、PTK2 Cells、UO.31 Cells
    SK-ChA1 Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁或悬浮,详见产品说明部分;形态特性:详见产品说明;相关产品有:Sc-1 Cells、Large Cell Lung Cancer-103H Cells、MZCRC1 Cells
    Pa14C Cells;背景说明:详见相关文献介绍;传代方法:1:2传代;生长特性:贴壁生长;形态特性:上皮样;相关产品有:DLD 1 Cells、HEK293T/17 Cells、UACC-893 Cells
    WERI Rb-1 Cells;背景说明:WERI-Rb-I细胞株是1974年R.M. McFall 和 T.W. Sery建立的两株人眼癌细胞系中的一株。 细胞能在Difco Bacto-Agar中存活但不形成克隆。 扫描电镜显示在表面囊泡,板状伪足和微绒毛在数量上和频率上的改变。 细胞分化研究,肿瘤治疗的动物模型和生化评价都涉及这株细胞。;传代方法:消化3-5分钟。1:2。3天内可长满。;生长特性:贴壁生长;形态特性:圆形细胞聚集成葡萄状;相关产品有:SUM 52PE Cells、Lewis Lung Cancer Cells、MDA330 Cells
    RM-1 Cells;背景说明:前列腺癌;C57BL/6;传代方法:1:2-1:3传代;每周换液2-3次。;生长特性:贴壁;形态特性:详见产品说明;相关产品有:HCFB(HCF) Cells、Human Kidney-2 Cells、Hs 895.T Cells
    BayGenomics ES cell line PST087 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    BayGenomics ES cell line XC788 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    CPTC-MUC17 CRD1 L CRD2-2 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    MCa3D Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    HCC827人非小细胞肺癌传代细胞活性强|送STR图谱
    SC34.89 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    LM142 Cells(拥有STR基因鉴定图谱)
    "    "PubMed=16187286; DOI=10.1002/ijc.21491
    Garnis C., Lockwood W.W., Vucic E., Ge Y., Girard L., Minna J.D., Gazdar A.F., Lam S., MacAulay C., Lam W.L.
    High resolution analysis of non-small cell lung cancer cell lines by whole genome tiling path array CGH.
    Int. J. Cancer 118:1556-1564(2006)

    PubMed=18083107; DOI=10.1016/j.cell.2007.11.025
    Rikova K., Guo A.-L., Zeng Q.-F., Possemato A., Yu J., Haack H., Nardone J., Lee K., Reeves C., Li Y., Hu Y.-R., Tan Z.-P., Stokes M.P., Sullivan L., Mitchell J., Wetzel R., MacNeill J., Ren J.-M., Yuan J., Bakalarski C.E., Villen J., Kornhauser J.M., Smith B., Li D.-Q., Zhou X.-M., Gygi S.P., Gu T.-L., Polakiewicz R.D., Rush J., Comb M.J.
    Global survey of phosphotyrosine signaling identifies oncogenic kinases in lung cancer.
    Cell 131:1190-1203(2007)

    PubMed=20215515; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-09-3458; PMCID=PMC2881662
    Rothenberg S.M., Mohapatra G., Rivera M.N., Winokur D., Greninger P., Nitta M., Sadow P.M., Sooriyakumar G., Brannigan B.W., Ulman M.J., Perera R.M., Wang R., Tam A., Ma X.-J., Erlander M., Sgroi D.C., Rocco J.W., Lingen M.W., Cohen E.E.W., Louis D.N., Settleman J., Haber D.A.
    A genome-wide screen for microdeletions reveals disruption of polarity complex genes in diverse human cancers.
    Cancer Res. 70:2158-2164(2010)

    PubMed=20679594; DOI=10.1093/jnci/djq279; PMCID=PMC2935474
    Gazdar A.F., Girard L., Lockwood W.W., Lam W.L., Minna J.D.
    Lung cancer cell lines as tools for biomedical discovery and research.
    J. Natl. Cancer Inst. 102:1310-1321(2010)

    PubMed=22460905; DOI=10.1038/nature11003; PMCID=PMC3320027
    Barretina J.G., Caponigro G., Stransky N., Venkatesan K., Margolin A.A., Kim S., Wilson C.J., Lehar J., Kryukov G.V., Sonkin D., Reddy A., Liu M., Murray L., Berger M.F., Monahan J.E., Morais P., Meltzer J., Korejwa A., Jane-Valbuena J., Mapa F.A., Thibault J., Bric-Furlong E., Raman P., Shipway A., Engels I.H., Cheng J., Yu G.-Y.K., Yu J.-J., Aspesi P. Jr., de Silva M., Jagtap K., Jones M.D., Wang L., Hatton C., Palescandolo E., Gupta S., Mahan S., Sougnez C., Onofrio R.C., Liefeld T., MacConaill L.E., Winckler W., Reich M., Li N.-X., Mesirov J.P., Gabriel S.B., Getz G., Ardlie K., Chan V., Myer V.E., Weber B.L., Porter J., Warmuth M., Finan P., Harris J.L., Meyerson M.L., Golub T.R., Morrissey M.P., Sellers W.R., Schlegel R., Garraway L.A.
    The Cancer Cell Line Encyclopedia enables predictive modelling of anticancer drug sensitivity.
    Nature 483:603-607(2012)

    PubMed=22751098; DOI=10.1038/ng.2330; PMCID=PMC3408577
    Zhang Z.-F., Lee J.C., Lin L.-P., Olivas V., Au V., LaFramboise T., Abdel-Rahman M., Wang X.-Q., Levine A.D., Rho J.K., Choi Y.J., Choi C.-M., Kim S.-W., Jang S.J., Park Y.S., Kim W.S., Lee D.H., Lee J.-S., Miller V.A., Arcila M.E., Ladanyi M., Moonsamy P., Sawyers C.L., Boggon T.J., Ma P.C., Costa C., Taron M., Rosell R., Halmos B., Bivona T.G.
    Activation of the AXL kinase causes resistance to EGFR-targeted therapy in lung cancer.
    Nat. Genet. 44:852-860(2012)

    PubMed=22961666; DOI=10.1158/2159-8290.CD-12-0112; PMCID=PMC3567922
    Byers L.A., Wang J., Nilsson M.B., Fujimoto J., Saintigny P., Yordy J.S., Giri U., Peyton M., Fan Y.-H., Diao L.-X., Masrorpour F., Shen L., Liu W.-B., Duchemann B., Tumula P., Bhardwaj V., Welsh J., Weber S., Glisson B.S., Kalhor N., Wistuba I.I., Girard L., Lippman S.M., Mills G.B., Coombes K.R., Weinstein J.N., Minna J.D., Heymach J.V.
    Proteomic profiling identifies dysregulated pathways in small cell lung cancer and novel therapeutic targets including PARP1.
    Cancer Discov. 2:798-811(2012)

    PubMed=23733853; DOI=10.1101/gr.152322.112; PMCID=PMC3759720
    Jia P.-L., Jin H.-L., Meador C.B., Xia J.-F., Ohashi K., Liu L., Pirazzoli V., Dahlman K.B., Politi K., Michor F., Zhao Z.-M., Pao W.
    Next-generation sequencing of paired tyrosine kinase inhibitor-sensitive and -resistant EGFR mutant lung cancer cell lines identifies spectrum of DNA changes associated with drug resistance.
    Genome Res. 23:1434-1445(2013)

    PubMed=25960936; DOI=10.4161/21624011.2014.954893; PMCID=PMC4355981
    Boegel S., Lower M., Bukur T., Sahin U., Castle J.C.
    A catalog of HLA type, HLA expression, and neo-epitope candidates in human cancer cell lines.
    OncoImmunology 3:e954893.1-e954893.12(2014)

    PubMed=25984343; DOI=10.1038/sdata.2014.35; PMCID=PMC4432652
    Cowley G.S., Weir B.A., Vazquez F., Tamayo P., Scott J.A., Rusin S., East-Seletsky A., Ali L.D., Gerath W.F.J., Pantel S.E., Lizotte P.H., Jiang G.-Z., Hsiao J., Tsherniak A., Dwinell E., Aoyama S., Okamoto M., Harrington W., Gelfand E.T., Green T.M., Tomko M.J., Gopal S., Wong T.C., Li H.-B., Howell S., Stransky N., Liefeld T., Jang D., Bistline J., Meyers B.H., Armstrong S.A., Anderson K.C., Stegmaier K., Reich M., Pellman D., Boehm J.S., Mesirov J.P., Golub T.R., Root D.E., Hahn W.C.
    Parallel genome-scale loss of function screens in 216 cancer cell lines for the identification of context-specific genetic dependencies.
    Sci. Data 1:140035-140035(2014)

    PubMed=25485619; DOI=10.1038/nbt.3080
    Klijn C., Durinck S., Stawiski E.W., Haverty P.M., Jiang Z.-S., Liu H.-B., Degenhardt J., Mayba O., Gnad F., Liu J.-F., Pau G., Reeder J., Cao Y., Mukhyala K., Selvaraj S.K., Yu M.-M., Zynda G.J., Brauer M.J., Wu T.D., Gentleman R.C., Manning G., Yauch R.L., Bourgon R., Stokoe D., Modrusan Z., Neve R.M., de Sauvage F.J., Settleman J., Seshagiri S., Zhang Z.-M.
    A comprehensive transcriptional portrait of human cancer cell lines.
    Nat. Biotechnol. 33:306-312(2015)

    PubMed=25877200; DOI=10.1038/nature14397
    Yu M., Selvaraj S.K., Liang-Chu M.M.Y., Aghajani S., Busse M., Yuan J., Lee G., Peale F.V., Klijn C., Bourgon R., Kaminker J.S., Neve R.M.
    A resource for cell line authentication, annotation and quality control.
    Nature 520:307-311(2015)

    PubMed=26589293; DOI=10.1186/s13073-015-0240-5; PMCID=PMC4653878
    Scholtalbers J., Boegel S., Bukur T., Byl M., Goerges S., Sorn P., Loewer M., Sahin U., Castle J.C.
    TCLP: an online cancer cell line catalogue integrating HLA type, predicted neo-epitopes, virus and gene expression.
    Genome Med. 7:118.1-118.7(2015)

    PubMed=26361996; DOI=10.1016/j.jprot.2015.09.003
    Grundner-Culemann K., Dybowski J.N., Klammer M., Tebbe A., Schaab C., Daub H.
    Comparative proteome analysis across non-small cell lung cancer cell lines.
    J. Proteomics 130:1-10(2016)

    PubMed=27397505; DOI=10.1016/j.cell.2016.06.017; PMCID=PMC4967469
    Iorio F., Knijnenburg T.A., Vis D.J., Bignell G.R., Menden M.P., Schubert M., Aben N., Goncalves E., Barthorpe S., Lightfoot H., Cokelaer T., Greninger P., van Dyk E., Chang H., de Silva H., Heyn H., Deng X.-M., Egan R.K., Liu Q.-S., Miroo T., Mitropoulos X., Richardson L., Wang J.-H., Zhang T.-H., Moran S., Sayols S., Soleimani M., Tamborero D., Lopez-Bigas N., Ross-Macdonald P., Esteller M., Gray N.S., Haber D.A., Stratton M.R., Benes C.H., Wessels L.F.A., Saez-Rodriguez J., McDermott U., Garnett M.J.
    A landscape of pharmacogenomic interactions in cancer.
    Cell 166:740-754(2016)

    PubMed=28196595; DOI=10.1016/j.ccell.2017.01.005; PMCID=PMC5501076
    Li J., Zhao W., Akbani R., Liu W.-B., Ju Z.-L., Ling S.-Y., Vellano C.P., Roebuck P., Yu Q.-H., Eterovic A.K., Byers L.A., Davies M.A., Deng W.-L., Gopal Y.N.V., Chen G., von Euw E.M., Slamon D.J., Conklin D., Heymach J.V., Gazdar A.F., Minna J.D., Myers J.N., Lu Y.-L., Mills G.B., Liang H.
    Characterization of human cancer cell lines by reverse-phase protein arrays.
    Cancer Cell 31:225-239(2017)

    PubMed=29444439; DOI=10.1016/j.celrep.2018.01.051; PMCID=PMC6343826
    Yuan T.L., Amzallag A., Bagni R., Yi M., Afghani S., Burgan W., Fer N., Strathern L.A., Powell K., Smith B., Waters A.M., Drubin D.A., Thomson T., Liao R., Greninger P., Stein G.T., Murchie E., Cortez E., Egan R.K., Procter L., Bess M., Cheng K.T., Lee C.-S., Lee L.C., Fellmann C., Stephens R., Luo J., Lowe S.W., Benes C.H., McCormick F.
    Differential effector engagement by oncogenic KRAS.
    Cell Rep. 22:1889-1902(2018)

    PubMed=29681454; DOI=10.1016/j.cell.2018.03.028; PMCID=PMC5935540
    McMillan E.A., Ryu M.-J., Diep C.H., Mendiratta S., Clemenceau J.R., Vaden R.M., Kim J.-H., Motoyaji T., Covington K.R., Peyton M., Huffman K., Wu X.-F., Girard L., Sung Y., Chen P.-H., Mallipeddi P.L., Lee J.Y., Hanson J., Voruganti S., Yu Y., Park S., Sudderth J., DeSevo C., Muzny D.M., Doddapaneni H., Gazdar A.F., Gibbs R.A., Hwang T.H., Heymach J.V., Wistuba I.I., Coombes K.R., Williams N.S., Wheeler D.A., MacMillan J.B., DeBerardinis R.J., Roth M.G., Posner B.A., Minna J.D., Kim H.S., White M.A.
    Chemistry-first approach for nomination of personalized treatment in lung cancer.
    Cell 173:864-878.e29(2018)

    PubMed=30038707; DOI=10.18632/oncotarget.25642; PMCID=PMC6049873
    Du L.-Q., Zhao Z.-Z., Suraokar M.B., Shelton S.S., Ma X.-Y., Hsiao T.-H., Minna J.D., Wistuba I.I., Pertsemlidis A.
    LMO1 functions as an oncogene by regulating TTK expression and correlates with neuroendocrine differentiation of lung cancer.
    Oncotarget 9:29601-29618(2018)

    PubMed=30894373; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-18-2747; PMCID=PMC6445675
    Dutil J., Chen Z.-H., Monteiro A.N.A., Teer J.K., Eschrich S.A.
    An interactive resource to probe genetic diversity and estimated ancestry in cancer cell lines.
    Cancer Res. 79:1263-1273(2019)

    PubMed=31068700; DOI=10.1038/s41586-019-1186-3; PMCID=PMC6697103
    Ghandi M., Huang F.W., Jane-Valbuena J., Kryukov G.V., Lo C.C., McDonald E.R. 3rd, Barretina J.G., Gelfand E.T., Bielski C.M., Li H.-X., Hu K., Andreev-Drakhlin A.Y., Kim J., Hess J.M., Haas B.J., Aguet F., Weir B.A., Rothberg M.V., Paolella B.R., Lawrence M.S., Akbani R., Lu Y.-L., Tiv H.L., Gokhale P.C., de Weck A., Mansour A.A., Oh C., Shih J., Hadi K., Rosen Y., Bistline J., Venkatesan K., Reddy A., Sonkin D., Liu M., Lehar J., Korn J.M., Porter D.A., Jones M.D., Golji J., Caponigro G., Taylor J.E., Dunning C.M., Creech A.L., Warren A.C., McFarland J.M., Zamanighomi M., Kauffmann A., Stransky N., Imielinski M., Maruvka Y.E., Cherniack A.D., Tsherniak A., Vazquez F., Jaffe J.D., Lane A.A., Weinstock D.M., Johannessen C.M., Morrissey M.P., Stegmeier F., Schlegel R., Hahn W.C., Getz G., Mills G.B., Boehm J.S., Golub T.R., Garraway L.A., Sellers W.R.
    Next-generation characterization of the Cancer Cell Line Encyclopedia.
    Nature 569:503-508(2019)

    PubMed=31803961; DOI=10.1002/jcb.29564; PMCID=PMC7496084
    Mulshine J.L., Ujhazy P., Antman M., Burgess C.M., Kuzmin I.A., Bunn P.A. Jr., Johnson B.E., Roth J.A., Pass H.I., Ross S.M., Aldige C.R., Wistuba I.I., Minna J.D.
    From clinical specimens to human cancer preclinical models -- a journey the NCI-cell line database-25 years later.
    J. Cell. Biochem. 121:3986-3999(2020)

    PubMed=31978347; DOI=10.1016/j.cell.2019.12.023; PMCID=PMC7339254
    Nusinow D.P., Szpyt J., Ghandi M., Rose C.M., McDonald E.R. 3rd, Kalocsay M., Jane-Valbuena J., Gelfand E.T., Schweppe D.K., Jedrychowski M.P., Golji J., Porter D.A., Rejtar T., Wang Y.K., Kryukov G.V., Stegmeier F., Erickson B.K., Garraway L.A., Sellers W.R., Gygi S.P.
    Quantitative proteomics of the Cancer Cell Line Encyclopedia.
    Cell 180:387-402.e16(2020)"

    风险提示:丁香通仅作为第三方平台,为商家信息发布提供平台空间。用户咨询产品时请注意保护个人信息及财产安全,合理判断,谨慎选购商品,商家和用户对交易行为负责。对于医疗器械类产品,请先查证核实企业经营资质和医疗器械产品注册证情况。

    图标文献和实验
    该产品被引用文献
    "PubMed=16187286; DOI=10.1002/ijc.21491
    Garnis C., Lockwood W.W., Vucic E., Ge Y., Girard L., Minna J.D., Gazdar A.F., Lam S., MacAulay C., Lam W.L.
    High resolution analysis of non-small cell lung cancer cell lines by whole genome tiling path array CGH.
    Int. J. Cancer 118:1556-1564(2006)

    PubMed=18083107; DOI=10.1016/j.cell.2007.11.025
    Rikova K., Guo A.-L., Zeng Q.-F., Possemato A., Yu J., Haack H., Nardone J., Lee K., Reeves C., Li Y., Hu Y.-R., Tan Z.-P., Stokes M.P., Sullivan L., Mitchell J., Wetzel R., MacNeill J., Ren J.-M., Yuan J., Bakalarski C.E., Villen J., Kornhauser J.M., Smith B., Li D.-Q., Zhou X.-M., Gygi S.P., Gu T.-L., Polakiewicz R.D., Rush J., Comb M.J.
    Global survey of phosphotyrosine signaling identifies oncogenic kinases in lung cancer.
    Cell 131:1190-1203(2007)

    PubMed=20215515; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-09-3458; PMCID=PMC2881662
    Rothenberg S.M., Mohapatra G., Rivera M.N., Winokur D., Greninger P., Nitta M., Sadow P.M., Sooriyakumar G., Brannigan B.W., Ulman M.J., Perera R.M., Wang R., Tam A., Ma X.-J., Erlander M., Sgroi D.C., Rocco J.W., Lingen M.W., Cohen E.E.W., Louis D.N., Settleman J., Haber D.A.
    A genome-wide screen for microdeletions reveals disruption of polarity complex genes in diverse human cancers.
    Cancer Res. 70:2158-2164(2010)

    PubMed=20679594; DOI=10.1093/jnci/djq279; PMCID=PMC2935474
    Gazdar A.F., Girard L., Lockwood W.W., Lam W.L., Minna J.D.
    Lung cancer cell lines as tools for biomedical discovery and research.
    J. Natl. Cancer Inst. 102:1310-1321(2010)

    PubMed=22460905; DOI=10.1038/nature11003; PMCID=PMC3320027
    Barretina J.G., Caponigro G., Stransky N., Venkatesan K., Margolin A.A., Kim S., Wilson C.J., Lehar J., Kryukov G.V., Sonkin D., Reddy A., Liu M., Murray L., Berger M.F., Monahan J.E., Morais P., Meltzer J., Korejwa A., Jane-Valbuena J., Mapa F.A., Thibault J., Bric-Furlong E., Raman P., Shipway A., Engels I.H., Cheng J., Yu G.-Y.K., Yu J.-J., Aspesi P. Jr., de Silva M., Jagtap K., Jones M.D., Wang L., Hatton C., Palescandolo E., Gupta S., Mahan S., Sougnez C., Onofrio R.C., Liefeld T., MacConaill L.E., Winckler W., Reich M., Li N.-X., Mesirov J.P., Gabriel S.B., Getz G., Ardlie K., Chan V., Myer V.E., Weber B.L., Porter J., Warmuth M., Finan P., Harris J.L., Meyerson M.L., Golub T.R., Morrissey M.P., Sellers W.R., Schlegel R., Garraway L.A.
    The Cancer Cell Line Encyclopedia enables predictive modelling of anticancer drug sensitivity.
    Nature 483:603-607(2012)

    PubMed=22751098; DOI=10.1038/ng.2330; PMCID=PMC3408577
    Zhang Z.-F., Lee J.C., Lin L.-P., Olivas V., Au V., LaFramboise T., Abdel-Rahman M., Wang X.-Q., Levine A.D., Rho J.K., Choi Y.J., Choi C.-M., Kim S.-W., Jang S.J., Park Y.S., Kim W.S., Lee D.H., Lee J.-S., Miller V.A., Arcila M.E., Ladanyi M., Moonsamy P., Sawyers C.L., Boggon T.J., Ma P.C., Costa C., Taron M., Rosell R., Halmos B., Bivona T.G.
    Activation of the AXL kinase causes resistance to EGFR-targeted therapy in lung cancer.
    Nat. Genet. 44:852-860(2012)

    PubMed=22961666; DOI=10.1158/2159-8290.CD-12-0112; PMCID=PMC3567922
    Byers L.A., Wang J., Nilsson M.B., Fujimoto J., Saintigny P., Yordy J.S., Giri U., Peyton M., Fan Y.-H., Diao L.-X., Masrorpour F., Shen L., Liu W.-B., Duchemann B., Tumula P., Bhardwaj V., Welsh J., Weber S., Glisson B.S., Kalhor N., Wistuba I.I., Girard L., Lippman S.M., Mills G.B., Coombes K.R., Weinstein J.N., Minna J.D., Heymach J.V.
    Proteomic profiling identifies dysregulated pathways in small cell lung cancer and novel therapeutic targets including PARP1.
    Cancer Discov. 2:798-811(2012)

    PubMed=23733853; DOI=10.1101/gr.152322.112; PMCID=PMC3759720
    Jia P.-L., Jin H.-L., Meador C.B., Xia J.-F., Ohashi K., Liu L., Pirazzoli V., Dahlman K.B., Politi K., Michor F., Zhao Z.-M., Pao W.
    Next-generation sequencing of paired tyrosine kinase inhibitor-sensitive and -resistant EGFR mutant lung cancer cell lines identifies spectrum of DNA changes associated with drug resistance.
    Genome Res. 23:1434-1445(2013)

    PubMed=25960936; DOI=10.4161/21624011.2014.954893; PMCID=PMC4355981
    Boegel S., Lower M., Bukur T., Sahin U., Castle J.C.
    A catalog of HLA type, HLA expression, and neo-epitope candidates in human cancer cell lines.
    OncoImmunology 3:e954893.1-e954893.12(2014)

    PubMed=25984343; DOI=10.1038/sdata.2014.35; PMCID=PMC4432652
    Cowley G.S., Weir B.A., Vazquez F., Tamayo P., Scott J.A., Rusin S., East-Seletsky A., Ali L.D., Gerath W.F.J., Pantel S.E., Lizotte P.H., Jiang G.-Z., Hsiao J., Tsherniak A., Dwinell E., Aoyama S., Okamoto M., Harrington W., Gelfand E.T., Green T.M., Tomko M.J., Gopal S., Wong T.C., Li H.-B., Howell S., Stransky N., Liefeld T., Jang D., Bistline J., Meyers B.H., Armstrong S.A., Anderson K.C., Stegmaier K., Reich M., Pellman D., Boehm J.S., Mesirov J.P., Golub T.R., Root D.E., Hahn W.C.
    Parallel genome-scale loss of function screens in 216 cancer cell lines for the identification of context-specific genetic dependencies.
    Sci. Data 1:140035-140035(2014)

    PubMed=25485619; DOI=10.1038/nbt.3080
    Klijn C., Durinck S., Stawiski E.W., Haverty P.M., Jiang Z.-S., Liu H.-B., Degenhardt J., Mayba O., Gnad F., Liu J.-F., Pau G., Reeder J., Cao Y., Mukhyala K., Selvaraj S.K., Yu M.-M., Zynda G.J., Brauer M.J., Wu T.D., Gentleman R.C., Manning G., Yauch R.L., Bourgon R., Stokoe D., Modrusan Z., Neve R.M., de Sauvage F.J., Settleman J., Seshagiri S., Zhang Z.-M.
    A comprehensive transcriptional portrait of human cancer cell lines.
    Nat. Biotechnol. 33:306-312(2015)

    PubMed=25877200; DOI=10.1038/nature14397
    Yu M., Selvaraj S.K., Liang-Chu M.M.Y., Aghajani S., Busse M., Yuan J., Lee G., Peale F.V., Klijn C., Bourgon R., Kaminker J.S., Neve R.M.
    A resource for cell line authentication, annotation and quality control.
    Nature 520:307-311(2015)

    PubMed=26589293; DOI=10.1186/s13073-015-0240-5; PMCID=PMC4653878
    Scholtalbers J., Boegel S., Bukur T., Byl M., Goerges S., Sorn P., Loewer M., Sahin U., Castle J.C.
    TCLP: an online cancer cell line catalogue integrating HLA type, predicted neo-epitopes, virus and gene expression.
    Genome Med. 7:118.1-118.7(2015)

    PubMed=26361996; DOI=10.1016/j.jprot.2015.09.003
    Grundner-Culemann K., Dybowski J.N., Klammer M., Tebbe A., Schaab C., Daub H.
    Comparative proteome analysis across non-small cell lung cancer cell lines.
    J. Proteomics 130:1-10(2016)

    PubMed=27397505; DOI=10.1016/j.cell.2016.06.017; PMCID=PMC4967469
    Iorio F., Knijnenburg T.A., Vis D.J., Bignell G.R., Menden M.P., Schubert M., Aben N., Goncalves E., Barthorpe S., Lightfoot H., Cokelaer T., Greninger P., van Dyk E., Chang H., de Silva H., Heyn H., Deng X.-M., Egan R.K., Liu Q.-S., Miroo T., Mitropoulos X., Richardson L., Wang J.-H., Zhang T.-H., Moran S., Sayols S., Soleimani M., Tamborero D., Lopez-Bigas N., Ross-Macdonald P., Esteller M., Gray N.S., Haber D.A., Stratton M.R., Benes C.H., Wessels L.F.A., Saez-Rodriguez J., McDermott U., Garnett M.J.
    A landscape of pharmacogenomic interactions in cancer.
    Cell 166:740-754(2016)

    PubMed=28196595; DOI=10.1016/j.ccell.2017.01.005; PMCID=PMC5501076
    Li J., Zhao W., Akbani R., Liu W.-B., Ju Z.-L., Ling S.-Y., Vellano C.P., Roebuck P., Yu Q.-H., Eterovic A.K., Byers L.A., Davies M.A., Deng W.-L., Gopal Y.N.V., Chen G., von Euw E.M., Slamon D.J., Conklin D., Heymach J.V., Gazdar A.F., Minna J.D., Myers J.N., Lu Y.-L., Mills G.B., Liang H.
    Characterization of human cancer cell lines by reverse-phase protein arrays.
    Cancer Cell 31:225-239(2017)

    PubMed=29444439; DOI=10.1016/j.celrep.2018.01.051; PMCID=PMC6343826
    Yuan T.L., Amzallag A., Bagni R., Yi M., Afghani S., Burgan W., Fer N., Strathern L.A., Powell K., Smith B., Waters A.M., Drubin D.A., Thomson T., Liao R., Greninger P., Stein G.T., Murchie E., Cortez E., Egan R.K., Procter L., Bess M., Cheng K.T., Lee C.-S., Lee L.C., Fellmann C., Stephens R., Luo J., Lowe S.W., Benes C.H., McCormick F.
    Differential effector engagement by oncogenic KRAS.
    Cell Rep. 22:1889-1902(2018)

    PubMed=29681454; DOI=10.1016/j.cell.2018.03.028; PMCID=PMC5935540
    McMillan E.A., Ryu M.-J., Diep C.H., Mendiratta S., Clemenceau J.R., Vaden R.M., Kim J.-H., Motoyaji T., Covington K.R., Peyton M., Huffman K., Wu X.-F., Girard L., Sung Y., Chen P.-H., Mallipeddi P.L., Lee J.Y., Hanson J., Voruganti S., Yu Y., Park S., Sudderth J., DeSevo C., Muzny D.M., Doddapaneni H., Gazdar A.F., Gibbs R.A., Hwang T.H., Heymach J.V., Wistuba I.I., Coombes K.R., Williams N.S., Wheeler D.A., MacMillan J.B., DeBerardinis R.J., Roth M.G., Posner B.A., Minna J.D., Kim H.S., White M.A.
    Chemistry-first approach for nomination of personalized treatment in lung cancer.
    Cell 173:864-878.e29(2018)

    PubMed=30038707; DOI=10.18632/oncotarget.25642; PMCID=PMC6049873
    Du L.-Q., Zhao Z.-Z., Suraokar M.B., Shelton S.S., Ma X.-Y., Hsiao T.-H., Minna J.D., Wistuba I.I., Pertsemlidis A.
    LMO1 functions as an oncogene by regulating TTK expression and correlates with neuroendocrine differentiation of lung cancer.
    Oncotarget 9:29601-29618(2018)

    PubMed=30894373; DOI=10.1158/0008-5472.CAN-18-2747; PMCID=PMC6445675
    Dutil J., Chen Z.-H., Monteiro A.N.A., Teer J.K., Eschrich S.A.
    An interactive resource to probe genetic diversity and estimated ancestry in cancer cell lines.
    Cancer Res. 79:1263-1273(2019)

    PubMed=31068700; DOI=10.1038/s41586-019-1186-3; PMCID=PMC6697103
    Ghandi M., Huang F.W., Jane-Valbuena J., Kryukov G.V., Lo C.C., McDonald E.R. 3rd, Barretina J.G., Gelfand E.T., Bielski C.M., Li H.-X., Hu K., Andreev-Drakhlin A.Y., Kim J., Hess J.M., Haas B.J., Aguet F., Weir B.A., Rothberg M.V., Paolella B.R., Lawrence M.S., Akbani R., Lu Y.-L., Tiv H.L., Gokhale P.C., de Weck A., Mansour A.A., Oh C., Shih J., Hadi K., Rosen Y., Bistline J., Venkatesan K., Reddy A., Sonkin D., Liu M., Lehar J., Korn J.M., Porter D.A., Jones M.D., Golji J., Caponigro G., Taylor J.E., Dunning C.M., Creech A.L., Warren A.C., McFarland J.M., Zamanighomi M., Kauffmann A., Stransky N., Imielinski M., Maruvka Y.E., Cherniack A.D., Tsherniak A., Vazquez F., Jaffe J.D., Lane A.A., Weinstock D.M., Johannessen C.M., Morrissey M.P., Stegmeier F., Schlegel R., Hahn W.C., Getz G., Mills G.B., Boehm J.S., Golub T.R., Garraway L.A., Sellers W.R.
    Next-generation characterization of the Cancer Cell Line Encyclopedia.
    Nature 569:503-508(2019)

    PubMed=31803961; DOI=10.1002/jcb.29564; PMCID=PMC7496084
    Mulshine J.L., Ujhazy P., Antman M., Burgess C.M., Kuzmin I.A., Bunn P.A. Jr., Johnson B.E., Roth J.A., Pass H.I., Ross S.M., Aldige C.R., Wistuba I.I., Minna J.D.
    From clinical specimens to human cancer preclinical models -- a journey the NCI-cell line database-25 years later.
    J. Cell. Biochem. 121:3986-3999(2020)

    PubMed=31978347; DOI=10.1016/j.cell.2019.12.023; PMCID=PMC7339254
    Nusinow D.P., Szpyt J., Ghandi M., Rose C.M., McDonald E.R. 3rd, Kalocsay M., Jane-Valbuena J., Gelfand E.T., Schweppe D.K., Jedrychowski M.P., Golji J., Porter D.A., Rejtar T., Wang Y.K., Kryukov G.V., Stegmeier F., Erickson B.K., Garraway L.A., Sellers W.R., Gygi S.P.
    Quantitative proteomics of the Cancer Cell Line Encyclopedia.
    Cell 180:387-402.e16(2020)"
    相关实验
    • 如何提高转染实验成功率

      的交叉污染不总是能通过镜检发现。如果有少量某种生长快速的细胞掺入到培养细胞种,几个月过后它们就会完全取代目标培养物。这种变化是逐渐发生的;而您可能甚至还未发现。 建立细胞系鉴定的检测标准。例如,对于人类细胞系而言,STR(短串联重复序列)图谱就是一种可靠的鉴定方法。或者更简单的解决方案就是,当怀疑有交叉污染时,如果有可能,就换用新鲜的,传代次数少的细胞源。 载体DNA 一般提示:对您纯化所得的载体进行质量检查。确定支持其正常功能的基因序列是否适合于您的细胞体系。在对您细胞

    • 如何提高转染实验的效率

      种类的细胞,那就有可能发生交叉污染,即使遵循最严格的分离操作规程这种情况也有可能发生。众所周知有许多细胞系被HeLa细胞所污染。和其他细胞系之间的交叉污染不总是能通过镜检发现。如果有少量某种生长快速的细胞掺入到培养细胞种,几个月过后它们就会完全取代目标培养物。这种变化是逐渐发生的;而您可能甚至还未发现。 建立细胞系鉴定的检测标准。例如,对于人类细胞系而言,STR(短串联重复序列)图谱就是一种可靠的鉴定方法。或者更简单的解决方案就是,当怀疑有交叉污染时,如果有可能,就换用新鲜的,传代次数少

    • PCR-聚合酶链反应的进展(转)

      排列组成。每个个体同一等位基因上这种序列重复的次数不同,故序列的长度不同,呈多态性。迄今已发现6000余个微卫星序列。自1992年起,法国人开始将微卫星序列作为标志物之一做基因图谱,将染色体上的基因划分开来,每个标志物之间的距离缩小到了1000kb,称为第二代基因图谱。近年人们利用微卫星序列研究遗传病基因的突变和丧失取得了很多进展,由于微卫星序列已被定位于各个染色体上,每条染色体可被微卫星分成若干区域,根据这些微卫星标记,可以将致病基因的位置定出并局限于最小范围。如果发现一个家系有2例同样一种遗传

    图标技术资料

    需要更多技术资料 索取更多技术资料

    资料下载:

    产品(54).jpg 附 (下载 0 次)

    同类产品报价

    产品名称
    产品价格
    公司名称
    报价日期
    ¥850
    上海冠导生物工程有限公司
    2025年07月13日询价
    ¥1580
    武汉华尔纳生物科技有限公司
    2025年07月15日询价
    ¥1400
    上海艾研生物科技有限公司
    2025年07月06日询价
    询价
    上海哈灵生物科技有限公司
    2025年07月13日询价
    ¥800
    上海抚生实业有限公司
    2025年07月01日询价
    文献支持
    HCC827人非小细胞肺癌传代细胞活性强|送STR图谱
    ¥850 - 2150