ABL501的构建与体外结合/阻断活性验证
验证ABL501能结合LAG-3和PD-L1并阻断其信号通路。
通过SPR、ELISA和FACS检测ABL501与LAG-3或PD-L1的结合能力,以及NF-κB报告基因实验检测其阻断PD-1/PD-L1和LAG-3/MHC-II相互作用的能力。
LAG-3xPD-L1 bispecific antibody potentiates antitumor responses of T cells through dendritic cell activation
研究包含体外细胞实验(T细胞激活、Treg抑制、DC成熟、细胞毒性)、人源化小鼠模型、转基因小鼠模型以及患者样本分析,并进行了机制验证和体内疗效验证。
人T细胞(CD4+和CD8+) 单核细胞来源的树突状细胞(mo-DC) A375肿瘤细胞系 人源化NSG小鼠模型 人LAG-3/PD-1/PD-L1基因敲入小鼠模型 胆管癌患者外周血样本
ABL501同时结合LAG-3和PD-L1,其EC50分别为0.15 nM和0.87 nM(图1B) T细胞增殖和IFN-γ分泌的检测浓度(如8.35 nM和66.8 nM) Treg抑制实验中的效应T细胞与Treg比例(4:1)和刺激细胞A375-OKT3 1G4 TCR-T细胞杀伤实验中E:T比例(1:10, 1:20)和ABL501浓度(66.8 nM) 体内实验中ABL501的给药剂量(如14 mg/kg, 10 mg/kg)和给药方案
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证ABL501能结合LAG-3和PD-L1并阻断其信号通路。
通过SPR、ELISA和FACS检测ABL501与LAG-3或PD-L1的结合能力,以及NF-κB报告基因实验检测其阻断PD-1/PD-L1和LAG-3/MHC-II相互作用的能力。
评估ABL501对CD4+和CD8+ T细胞活化的增强作用。
通过混合淋巴细胞反应、CMV裂解物或A375-OKT3刺激,检测T细胞增殖(CTV稀释)和细胞因子分泌(IFN-γ、IL-2、TNF-α)。
验证ABL501是否通过增强效应T细胞反应来缓解Treg介导的免疫抑制。
使用A375-OKT3细胞刺激效应T细胞和Treg共培养,检测效应T细胞增殖和IL-2分泌。
验证ABL501是否促进DC成熟,增强抗原交叉呈递。
将mo-DC与板结合或可溶性抗PD-L1或CHO-LAG-3细胞共孵育,检测DC活化标志物(HLA-ABC, CD40等)和细胞因子分泌。
验证ABL501增强CD8+ T细胞对肿瘤细胞的细胞毒性,并确定其是否通过桥接作用。
使用1G4 TCR-CD8+ T细胞与A375细胞共培养检测杀伤率;通过流式检测T细胞与A375-OKT3-PD-L1的偶联。
评估ABL501在体内模型中的抗肿瘤活性和安全性。
使用A375-PD-L1异种移植NSG小鼠模型、CT26-hPD-L1或MC38-hPD-L1基因敲入小鼠模型,给予ABL501治疗,监测肿瘤生长。
鉴定与ABL501反应相关的免疫细胞亚群。
对胆管癌患者外周血进行高维流式细胞分析(viSNE, FlowSOM, CITRUS),并检测T细胞对ABL501的响应。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | -- | -- |
| 粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子 | -- | -- | |
| 白细胞介素-4 | -- | -- | |
| 白细胞介素-2 | Peprotech | -- | |
| 转化生长因子-β | Peprotech | -- | |
| 细胞分离 | EasySep人T细胞分离试剂盒 | STEMCELL Technologies | -- |
| MojoSort人CD14纳米磁珠 | BioLegend | -- | |
| EasySep人CD8+ T细胞富集试剂盒 | STEMCELL Technologies | -- | |
| 细胞增殖检测 | 细胞示踪紫 | Invitrogen | -- |
| 羧基荧光素二乙酸琥珀酰亚胺酯 | Invitrogen | -- | |
| T细胞激活 | Dynabeads人T细胞激活剂CD3/CD28 | Invitrogen | -- |
| 细胞因子检测 | IFN-γ ELISA试剂盒 | -- | -- |
| IL-2 ELISA试剂盒 | BioLegend | -- | |
| Luminex检测试剂盒 | R&D Systems | -- | |
| 流式细胞术 | 抗人CD3抗体(HIT3a) | -- | -- |
| 抗人CD4抗体(OKT4) | -- | -- | |
| 抗人CD8抗体(SK1) | -- | -- | |
| 抗人Foxp3抗体(236A-E7) | -- | -- | |
| TruStain FcX | BioLegend | -- | |
| 细胞内染色 | Cytofix/Cytoperm试剂盒 | BD Biosciences | -- |
| Foxp3/转录因子染色缓冲液套装 | Invitrogen | -- | |
| 基因敲除 | pX330-mCherry载体 | Addgene | 98750 |
| 慢病毒包装 | pHR慢病毒载体 | Addgene | 79125 |
| psPAX2包装质粒 | Addgene | 12260 | |
| pVSVg包膜质粒 | Addgene | 8454 | |
| 慢病毒转导 | 聚凝胺 | -- | -- |
| 动物实验 | NSG小鼠 | JA Bio | -- |
| BALB/c-hPD1/hLAG3小鼠 | GemPharmatech | T004622 | |
| C57BL/6-hPD1/hPDL1/hLAG3小鼠 | GemPharmatech | T006876 | |
| CT26-hPD-L1(Tg)-mPD-L1(KO)细胞 | GemPharmatech | -- | |
| MC38-hPD-L1(Tg)-mPD-L1(KO)细胞 | GemPharmatech | -- | |
| 数据分析 | Cytobank软件 | Beckman Coulter | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| MLR实验 | CD3+ T细胞分离方法、DC分化条件(GM-CSF和IL-4浓度)、T细胞与DC比例(15:1)、共培养时间(5天)、抗体浓度(如33.4 nM) 阅读提示:Materials and methods: Mixed lymphocyte reaction (MLR) assay |
| Treg抑制实验 | Treg细胞分选和扩增方案(Dynabeads, IL-2, TGF-β)、效应T细胞与Treg比例(4:1)、刺激细胞A375-OKT3的制备、抗体浓度(66.8 nM) 阅读提示:Materials and methods: Human Treg cell suppression assay |
| DC成熟实验 | DC分化方案(GM-CSF和IL-4浓度)、刺激条件(板结合或可溶性抗PD-L1浓度10 μg/mL)、CHO-LAG-3共培养条件(抗体浓度66.8 nM,时间2天) 阅读提示:Materials and methods: Luminex multiplex cytokine assay, Figure 3E-G |
| 肿瘤细胞杀伤实验 | 1G4 TCR-T细胞制备(转导方法、IL-2浓度)、E:T比例(1:10, 1:20)、共培养时间(2天)、抗体浓度(如66.8 nM) 阅读提示:Materials and methods: 1G4 TCR-T cell assay, Figure 4 |
| 体内实验 | 细胞系和品系(A375-PD-L1、CT26-hPD-L1、MC38-hPD-L1)、小鼠品系(NSG, BALB/c-hPD1/hLAG3, C57BL/6-hPD1/hPDL1/hLAG3)、给药剂量和方案(如ABL501 14 mg/kg, 10 mg/kg)、肿瘤接种细胞数 阅读提示:Materials and methods: Xenogeneic tumor model, Syngeneic tumor model |