检测纤维化过程中m6A水平变化
明确m6A修饰在肺纤维化过程中的变化情况。
使用比色定量法和m6A点印迹检测人IPF肺组织、BLM小鼠肺组织及TGF-β1诱导的WI-38细胞中总RNA和mRNA的m6A水平;通过免疫荧光和Western blot检测METTL3和ALKBH5表达;分析METTL3表达与胶原沉积的相关性。
m6A modification regulates lung fibroblast-to-myofibroblast transition through modulating KCNH6 mRNA translation
包含体外细胞实验(WI-38细胞FMT模型、siRNA/质粒转染)、体内动物模型(BLM诱导的小鼠肺纤维化模型、shRNA腺病毒敲低METTL3)、组学分析(MeRIP-seq)、临床样本验证(IPF患者肺组织),以及机制验证(RIP、多聚体分析、回补实验)。
WI-38人肺成纤维细胞系(TGF-β1诱导FMT模型) BLM诱导的C57BL/6J小鼠肺纤维化模型 IPF患者肺组织样本
TGF-β1处理10 ng/mL,48小时诱导FMT METTL3敲低(siRNA2或shRNA2)抑制m6A水平及FMT KCNH6过表达质粒(WT vs m6A motif突变)回补实验 YTHDF1敲低或过表达影响KCNH6表达 BLM诱导小鼠模型(3 mg/kg气管内注射,4周后取材)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
明确m6A修饰在肺纤维化过程中的变化情况。
使用比色定量法和m6A点印迹检测人IPF肺组织、BLM小鼠肺组织及TGF-β1诱导的WI-38细胞中总RNA和mRNA的m6A水平;通过免疫荧光和Western blot检测METTL3和ALKBH5表达;分析METTL3表达与胶原沉积的相关性。
鉴定IPF中m6A修饰异常变化的基因。
对正常和IPF人肺组织进行MeRIP-seq,分析m6A峰分布、共识基序,并鉴定差异甲基化基因。
明确METTL3介导的m6A修饰是否影响FMT和成纤维细胞增殖。
在TGF-β1诱导的WI-38细胞中,通过siRNA敲低METTL3或过表达METTL3,检测m6A水平、α-SMA和Col-1表达、EdU掺入及CCK8活性。
验证在动物模型中降低m6A水平是否减轻肺纤维化和FMT。
在BLM诱导的肺纤维化小鼠模型中,通过气管内注射shRNA腺病毒(AAV6)敲低METTL3,检测m6A水平、胶原沉积(Masson三色和天狼星红染色)、α-SMA和Col-1表达、以及成纤维细胞向肌成纤维细胞转化(desmin和α-SMA共染)。
确认KCNH6是m6A调控FMT过程中的重要下游基因。
通过MeRIP-seq筛选出高甲基化且mRNA变化显著的基因,选择KCNH6;通过RIP验证m6A富集;检测TGF-β1和METTL3敲低对KCNH6蛋白和mRNA的影响;利用siRNA敲低KCNH6检测FMT标志物;构建KCNH6过表达质粒(WT或m6A motif突变)进行回补实验。
揭示m6A修饰调控KCNH6表达的分子机制。
通过RIP检测YTHDF1/2/3与KCNH6 mRNA的结合;敲低或过表达YTHDF1后检测KCNH6蛋白表达;多聚体分析检测KCNH6 mRNA的翻译效率。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 药物处理 | 转化生长因子-β1 | PeproTech | -- |
| 转染 | Lipofectamine RNAiMax转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 动物实验 | 博来霉素硫酸盐 | Selleckchem | -- |
| RNA提取 | Trizol试剂 | Invitrogen | -- |
| m6A定量 | m6A RNA甲基化定量试剂盒 | Abcam | ab185912 |
| mRNA纯化 | Dynabead mRNA纯化试剂盒 | Invitrogen | 61006 |
| Western blot | 抗METTL3抗体 | Abcam | ab195352 |
| 抗ALKBH5抗体 | Atlas Antibodies | HPA007196 | |
| 抗FTO抗体 | Abcam | ab92821 | |
| 抗α-SMA抗体 | Abcam | ab7817 | |
| 抗胶原1α1抗体 | CST | 84336S | |
| 抗KCNH6抗体 | Affinity Bioscience | DF9766 | |
| 抗YTHDF1抗体 | Proteintech | 17479-1-AP | |
| 细胞增殖检测 | EdU DNA细胞增殖试剂盒 | RiboBio | -- |
| CCK8试剂盒 | Doindo | -- | |
| 免疫荧光 | 抗m6A抗体 | Synaptic Systems | 202003 |
| RNA免疫沉淀 | Magna RIP RNA结合蛋白免疫沉淀试剂盒 | Millipore | -- |
| 抗YTHDF2抗体 | Proteintech | 24744-1-AP | |
| 抗YTHDF3抗体 | Proteintech | 25537-1-AP |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与FMT诱导 | 细胞系(WI-38)、培养条件(DMEM+10% FBS,37℃,5% CO2)、TGF-β1浓度(10 ng/mL)和处理时间(48小时) 阅读提示:Methods:Cell culture, treatments, and transfection |
| METTL3敲低处理 | siRNA序列(Table S1)、转染试剂(Lipofectamine RNAiMax)、siRNA浓度(50 nM)、转染时间(48小时) 阅读提示:Methods:Cell culture, treatments, and transfection; Figure S2 |
| BLM诱导肺纤维化模型 | 小鼠品系(C57BL/6J雄性8-10周)、BLM剂量(3 mg/kg)、给药方式(气管内注射)、取材时间(4周) 阅读提示:Methods:BLM-induced pulmonary fibrosis model |
| 体内METTL3敲低 | AAV6-shRNA滴度(2.14×10^13 病毒颗粒/mL)、注射体积(约30 μL)、注射时间(BLM前3周) 阅读提示:Methods:shRNA adeno-associated virus (AAV) production and intratracheal injection |
| m6A检测 | RNA输入量(200 ng用于比色法,200 ng mRNA用于dot blot)、抗体(anti-m6A, Synaptic Systems 202003, 1:5000) 阅读提示:Methods:Quantification of m6A in total RNA; Dot-blot assay |