m6A修饰通过调节KCNH6 mRNA翻译调控肺成纤维细胞向肌成纤维细胞转化

m6A modification regulates lung fibroblast-to-myofibroblast transition through modulating KCNH6 mRNA translation

作者信息Jia-Xiang Zhang, Pei-Jie Huang, Da-Peng Wang, Wen-Yu Yang, Jian Lu, Yong Zhu, Xiao-Xiao Meng, Xin Wu, Qiu-Hai Lin, Hui Lv, Hui Xie, Rui-Lan Wang
PMID34111558
期刊Mol Ther
发布时间2021-12
DOI10.1016/j.ymthe.2021.06.008

实验完整度

高

包含体外细胞实验(WI-38细胞FMT模型、siRNA/质粒转染)、体内动物模型(BLM诱导的小鼠肺纤维化模型、shRNA腺病毒敲低METTL3)、组学分析(MeRIP-seq)、临床样本验证(IPF患者肺组织),以及机制验证(RIP、多聚体分析、回补实验)。

主要模型

WI-38人肺成纤维细胞系(TGF-β1诱导FMT模型) BLM诱导的C57BL/6J小鼠肺纤维化模型 IPF患者肺组织样本

重点核对

TGF-β1处理10 ng/mL,48小时诱导FMT METTL3敲低(siRNA2或shRNA2)抑制m6A水平及FMT KCNH6过表达质粒(WT vs m6A motif突变)回补实验 YTHDF1敲低或过表达影响KCNH6表达 BLM诱导小鼠模型(3 mg/kg气管内注射,4周后取材)

摘要

特发性肺纤维化(IPF)是一种慢性、致命的肺部疾病,其特征是肺实质进行性和不可逆的异常基质沉积。肌成纤维细胞主要来源于常驻成纤维细胞,通过成纤维细胞向肌成纤维细胞转化(FMT)产生,是肺纤维化中主要的胶原产生细胞。N6-甲基腺苷(m6A)修饰已涉及多种生物过程。然而,m6A修饰在肺纤维化中的作用仍不清楚。在本研究中,我们揭示了在博来霉素(BLM)诱导的肺纤维化小鼠模型、FMT衍生的肌成纤维细胞和IPF患者肺样本中,m6A修饰上调。通过沉默甲基转移酶样3(METTL3)降低m6A水平在体外和体内抑制FMT过程。机制上,KCNH6参与m6A调节的FMT过程。m6A修饰通过以YTH结构域家族1(YTHDF1)依赖的方式调节其翻译来调控KCNH6的表达。总之,我们的研究强调了m6A修饰在肺纤维化中的关键作用。通过靶向METTL3操纵m6A修饰可能成为治疗肺纤维化的有前景的策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
m6A修饰在肺纤维化发生发展中的作用及其分子机制是什么?
核心机制
m6A修饰在纤维化过程中上调,METTL3介导的m6A甲基化通过YTHDF1依赖的方式促进KCNH6 mRNA的翻译,从而调控成纤维细胞向肌成纤维细胞转化(FMT)。
主要证据
IPF患者及BLM小鼠肺组织中m6A水平升高;TGF-β1诱导WI-38细胞FMT模型中METTL3沉默抑制FMT、细胞增殖及KCNH6蛋白表达;MeRIP-seq显示KCNH6是显著高甲基化的m6A靶点;RIP验证YTHDF1与KCNH6 mRNA结合;多聚体分析显示METTL3敲低抑制KCNH6 mRNA翻译;KCNH6回补实验证实其在m6A调控FMT中的作用。
研究意义
揭示m6A修饰在肺纤维化中的关键作用,为IPF治疗提供了新靶点(METTL3和KCNH6),通过干预m6A修饰可能成为肺纤维化的潜在治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

检测纤维化过程中m6A水平变化

明确m6A修饰在肺纤维化过程中的变化情况。

使用比色定量法和m6A点印迹检测人IPF肺组织、BLM小鼠肺组织及TGF-β1诱导的WI-38细胞中总RNA和mRNA的m6A水平;通过免疫荧光和Western blot检测METTL3和ALKBH5表达;分析METTL3表达与胶原沉积的相关性。

2

MeRIP-seq分析m6A靶基因

鉴定IPF中m6A修饰异常变化的基因。

对正常和IPF人肺组织进行MeRIP-seq,分析m6A峰分布、共识基序,并鉴定差异甲基化基因。

3

体外验证METTL3调控FMT

明确METTL3介导的m6A修饰是否影响FMT和成纤维细胞增殖。

在TGF-β1诱导的WI-38细胞中,通过siRNA敲低METTL3或过表达METTL3,检测m6A水平、α-SMA和Col-1表达、EdU掺入及CCK8活性。

4

体内验证METTL3沉默抑制肺纤维化

验证在动物模型中降低m6A水平是否减轻肺纤维化和FMT。

在BLM诱导的肺纤维化小鼠模型中,通过气管内注射shRNA腺病毒(AAV6)敲低METTL3,检测m6A水平、胶原沉积(Masson三色和天狼星红染色)、α-SMA和Col-1表达、以及成纤维细胞向肌成纤维细胞转化(desmin和α-SMA共染)。

5

鉴定KCNH6为关键靶基因

确认KCNH6是m6A调控FMT过程中的重要下游基因。

通过MeRIP-seq筛选出高甲基化且mRNA变化显著的基因,选择KCNH6;通过RIP验证m6A富集;检测TGF-β1和METTL3敲低对KCNH6蛋白和mRNA的影响;利用siRNA敲低KCNH6检测FMT标志物;构建KCNH6过表达质粒(WT或m6A motif突变)进行回补实验。

6

阐明m6A调控KCNH6翻译的机制

揭示m6A修饰调控KCNH6表达的分子机制。

通过RIP检测YTHDF1/2/3与KCNH6 mRNA的结合;敲低或过表达YTHDF1后检测KCNH6蛋白表达;多聚体分析检测KCNH6 mRNA的翻译效率。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证细胞功能变化
验证RNA-蛋白相互作用
评估翻译效率
免疫检测

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基----
胎牛血清Gibco--
转化生长因子-β1PeproTech--
Lipofectamine RNAiMax转染试剂Thermo Fisher Scientific--
博来霉素硫酸盐Selleckchem--
Trizol试剂Invitrogen--
m6A RNA甲基化定量试剂盒Abcamab185912
Dynabead mRNA纯化试剂盒Invitrogen61006
抗METTL3抗体Abcamab195352
抗ALKBH5抗体Atlas AntibodiesHPA007196
抗FTO抗体Abcamab92821
抗α-SMA抗体Abcamab7817
抗胶原1α1抗体CST84336S
抗KCNH6抗体Affinity BioscienceDF9766
抗YTHDF1抗体Proteintech17479-1-AP
EdU DNA细胞增殖试剂盒RiboBio--
CCK8试剂盒Doindo--
抗m6A抗体Synaptic Systems202003
Magna RIP RNA结合蛋白免疫沉淀试剂盒Millipore--
抗YTHDF2抗体Proteintech24744-1-AP
抗YTHDF3抗体Proteintech25537-1-AP

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与FMT诱导
细胞系(WI-38)、培养条件(DMEM+10% FBS,37℃,5% CO2)、TGF-β1浓度(10 ng/mL)和处理时间(48小时)
阅读提示:Methods:Cell culture, treatments, and transfection
METTL3敲低处理
siRNA序列(Table S1)、转染试剂(Lipofectamine RNAiMax)、siRNA浓度(50 nM)、转染时间(48小时)
阅读提示:Methods:Cell culture, treatments, and transfection; Figure S2
BLM诱导肺纤维化模型
小鼠品系(C57BL/6J雄性8-10周)、BLM剂量(3 mg/kg)、给药方式(气管内注射)、取材时间(4周)
阅读提示:Methods:BLM-induced pulmonary fibrosis model
体内METTL3敲低
AAV6-shRNA滴度(2.14×10^13 病毒颗粒/mL)、注射体积(约30 μL)、注射时间(BLM前3周)
阅读提示:Methods:shRNA adeno-associated virus (AAV) production and intratracheal injection
m6A检测
RNA输入量(200 ng用于比色法,200 ng mRNA用于dot blot)、抗体(anti-m6A, Synaptic Systems 202003, 1:5000)
阅读提示:Methods:Quantification of m6A in total RNA; Dot-blot assay