植物提取与分级分离
获得三种柑橘叶的粗提物和乙酸乙酯部分,用于生物活性筛选。
将干燥的柑橘叶(各1000g)用70%乙醇(1:5 w/v)浸泡72小时,重复三次,浓缩得到粗提物;然后依次用正己烷、二氯甲烷、乙酸乙酯萃取,保留粗提物和乙酸乙酯部分。
Comparative Bioassay-Guided Fractionation of Citrus Species: Phytochemical Characterization and Nanoformulation of a Polyphenol-Rich Leaf Fraction from Citrus aurantifolia for Skin Anti-Aging Applications
包含体外模型(人皮肤成纤维细胞划痕愈合)、体内动物模型(UVA诱导光老化小鼠)以及分子动力学模拟,且明确包含功能验证和机制验证。
人皮肤成纤维细胞(HSF) UVA诱导光老化小鼠模型 人白细胞弹性蛋白酶、梭菌胶原酶、蘑菇酪氨酸酶(体外酶抑制模型)
提取溶剂:70%乙醇,料液比1:5,反复提取三次 乙酸乙酯部分的制备:依次用正己烷、二氯甲烷、乙酸乙酯萃取 纳米制剂:乙醇注入法,Span 60:Tween 80为3:1,加入或不加入1%丙二醇 UVA照射条件:368 nm,每日60分钟,持续6周,然后局部给药4周 体内实验动物:雄性瑞士白化小鼠,体重25-30g,每组10只
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得三种柑橘叶的粗提物和乙酸乙酯部分,用于生物活性筛选。
将干燥的柑橘叶(各1000g)用70%乙醇(1:5 w/v)浸泡72小时,重复三次,浓缩得到粗提物;然后依次用正己烷、二氯甲烷、乙酸乙酯萃取,保留粗提物和乙酸乙酯部分。
评估各提取物和部分的抗氧化、酶抑制、细胞毒性和总酚/黄酮含量,以选择最优部分。
对粗提物和乙酸乙酯部分进行DPPH、β-胡萝卜素漂白、ORAC抗氧化实验,弹性蛋白酶、胶原酶、酪氨酸酶抑制实验,SRB-U细胞毒性实验,以及总酚和总黄酮含量测定。
鉴定最优部分(CAE)的化学成分,并以橙皮苷为标志物进行定量。
使用LC-MS/MS和UPLC-PDA分析CAE的化学成分,鉴定14种化合物,并通过UPLC-PDA定量橙皮苷含量。
制备CAE负载的Span基纳米囊泡,并评估其理化性质,选择最优制剂。
采用乙醇注入法制备CAE负载的Span基纳米囊泡,评估粒径、PDI、Zeta电位、包封率、形态(TEM)、FTIR和体外释放。
评估CAE和CAEnp对人皮肤成纤维细胞迁移的影响。
在HSF细胞中划痕,加入浓度10 μg/mL的CAE、CAEnp或CAC,测定0, 24, 48, 72小时的伤口闭合率。
评估CAE和CAEnp对UVA诱导光老化小鼠的改善作用。
雄性瑞士白化小鼠(25-30g)分组,UVA照射(368 nm)60分钟/天,持续6周,然后局部涂敷含CAE或CAEnp的凝胶(500 mg/kg)每周3次,共4周,评估组织病理学、p62、NQO1、Keap1和Nrf2表达。
探究橙皮苷与弹性蛋白酶和胶原酶的相互作用机制。
使用AutoDock Vina进行分子对接,然后使用GROMACS进行100 ns分子动力学模拟,分析RMSD、Rg、RMSF、氢键等。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 植物提取与分级分离 | 70%乙醇 | Fisher Scientific | -- |
| 正己烷 | -- | -- | |
| 乙酸乙酯 | -- | -- | |
| 酶抑制实验 | 弹性蛋白酶 | Sigma-Aldrich | -- |
| I型胶原酶 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 酪氨酸酶 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 细胞培养 | HSF细胞系 | Nawah Scientific Inc. | -- |
| 成纤维细胞生长试剂盒-无血清培养基 | ATCC | PCS-201-040 | |
| 纳米制剂制备 | 司盘60 | Sigma-Aldrich | -- |
| 吐温80 | -- | -- | |
| 丙二醇 | -- | -- | |
| 纳米制剂表征 | Zetasizer粒度仪 | Malvern Instruments | -- |
| 透射电子显微镜(JEM1230) | Jeol | -- | |
| 傅里叶变换红外光谱仪 | Bruker | Model | |
| 体外药物释放 | 纤维素透析袋 | -- | -- |
| 凝胶制备 | 卡波姆凝胶 | -- | -- |
| 体内实验 | 紫外灯 | -- | 368 |
| p62 ELISA试剂盒 | MyBioSource | -- | |
| NQO1 ELISA试剂盒 | MyBioSource | -- | |
| qRT-PCR | TRIzol plus RNA纯化试剂盒 | Life Technologies | -- |
| High-Capacity cDNA反转录试剂盒 | Applied Biosystems | -- | |
| Rotor-Gene Q 5 plex实时荧光定量PCR仪 | Corbett Life Science | -- | |
| SYBR Green PCR预混液 | Applied Biosystems | -- | |
| UPLC分析 | 超高效液相色谱系统 | Thermo Fisher Scientific | Ultimate |
| Hypersil GOLD色谱柱 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| LC-MS/MS | Acquity Xevo TQD质谱系统 | Waters | -- |
| Acquity BEH C18色谱柱 | Waters | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 植物提取与分级分离 | 提取溶剂、浓度、时间、提取次数;分级分离使用的溶剂顺序和比例;浓缩温度。 阅读提示:参见4.2节 |
| 生物活性筛选 | DPPH、β-胡萝卜素漂白、ORAC实验的浓度范围;酶抑制实验的酶浓度、底物浓度、反应时间、参考抑制剂;细胞毒性实验的细胞系、处理时间和浓度范围;总酚和总黄酮测定方法。 阅读提示:参见4.3节和2.1节 |
| 植物化学表征 | LC-MS/MS和UPLC-PDA的具体色谱条件、梯度程序、流速、检测波长;橙皮苷定量方法。 阅读提示:参见4.5节和4.6节 |
| 纳米制剂制备 | 乙醇注入法的具体操作:Span 60与Tween 80的比例、丙二醇浓度、搅拌速度和时间、超声时间和功率。 阅读提示:参见4.7节 |
| 纳米制剂表征 | DLS测量条件;TEM样品制备方法;FTIR制样方法;体外释放的透析袋处理方法、释放介质、温度、转速和取样时间点。 阅读提示:参见4.8节 |
| 体外划痕愈合实验 | 细胞接种密度、培养时间;划痕工具和宽度;处理浓度;时间点;数据分析软件。 阅读提示:参见4.9节 |
| 体内光老化模型 | 动物品系、性别、体重;分组和每组数量;UVA照射波长、剂量、时间、频率;给药方式、剂量、频率和持续时间;检测指标及方法。 阅读提示:参见4.10节 |
| 分子对接与分子动力学模拟 | 蛋白结构来源(PDB code);配体结构来源;对接软件和参数;MD软件、力场、水模型、模拟时间、温度和压力控制。 阅读提示:参见4.12节和4.13节 |