RT-MPs的制备与表征
验证工程化RT-MPs的形态、大小和膜蛋白表达。
将肿瘤细胞辐照后收集MPs,通过TEM、NTA、Western blot表征。
Irradiated engineered tumor cell-derived microparticles remodel the tumor immune microenvironment and enhance antitumor immunity
包含体外细胞实验、动物模型(MPE及皮下移植瘤)、免疫细胞清除实验、免疫记忆检测及生物相容性评估等多层级验证。
小鼠Lewis肺癌(LLC)细胞 小鼠B16-F10黑色素瘤细胞 恶性胸腔积液(MPE)小鼠模型 皮下移植瘤小鼠模型
RT-MPs制备:肿瘤细胞接受20 Gy X射线照射,72小时后收集培养基。 MPE模型建立:LLC-luc细胞(2×10^5)注射入右侧胸腔。 治疗剂量:RT-MPs胸腔内注射,2 μg/μL,共4次,每次间隔2天。 PD-1 mAb剂量:10 mg/kg腹腔注射,共3次,每次间隔2天。 细胞清除:使用抗CD4、CD8抗体(200 μg/只)等清除相应免疫细胞。
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证工程化RT-MPs的形态、大小和膜蛋白表达。
将肿瘤细胞辐照后收集MPs,通过TEM、NTA、Western blot表征。
评估工程化RT-MPs对肿瘤细胞的直接杀伤作用和趋化功能。
通过流式细胞术、克隆形成实验评估细胞毒性;通过Transwell实验评估趋化性。
比较不同工程化RT-MPs对MPE小鼠生存期和肿瘤负荷的影响。
建立MPE模型,给予不同RT-MPs治疗,监测生存期和生物发光信号。
探究联合治疗对肿瘤免疫微环境的影响。
通过流式细胞术分析胸腔灌洗液和肿瘤组织中免疫细胞比例,通过多因子检测试剂盒分析细胞因子水平。
验证联合治疗所依赖的免疫细胞类型。
使用特异性抗体或药物清除CD4+ T、CD8+ T、巨噬细胞、NK细胞或B细胞,观察治疗效果变化。
评估联合治疗是否产生免疫记忆以及生物安全性。
对治愈小鼠再次接种肿瘤细胞,监测肿瘤生长;通过血液学、生化分析及组织学检查评估安全性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | 10270-106 | |
| RT-MPs制备 | Trilogy系统直线加速器 | Varian Medical Systems | -- |
| TEM | HT7700-SS/FEI Tecnai G20 TWIN透射电镜 | -- | -- |
| 动态光散射 | ZetaSizer Nano-ZS粒度仪 | Malvern Instruments Ltd. | -- |
| 蛋白提取 | 膜和胞浆蛋白提取试剂盒 | Beyotime | P0033 |
| Western blot | NcmECL Ultra化学发光底物 | NCM Biotech | P10100 |
| 抗TSG101抗体 | Abcam | ab133586 | |
| 抗CD9抗体 | Abclonal | A19027 | |
| 抗Na/K-ATPase α1抗体 | Abclonal | A19278 | |
| 抗Flag抗体 | Sigma-Aldrich | F1804 | |
| 抗Myc标签抗体 | Proteintech | 60003-2-Ig | |
| 流式细胞术 | Zombie NIR固定活力试剂盒 | BioLegend | 423106 |
| 免疫荧光 | DAPI染色液 | Servicebio | G1012 |
| Dragonfly共聚焦显微镜 | ANDOR | -- | |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | X2372 |
| RNA浓度测定 | NanoDrop ND-1000分光光度计 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 逆转录 | HiScript III逆转录预混液(含gDNA去除) | Vazyme | R323 |
| qRT-PCR | ChamQ SYBR qPCR预混液 | Vazyme | Q331-02 |
| 趋化实验 | Corning Transwell小室 | Corning | 3421 |
| 动物实验 | PD-1单克隆抗体 | BioXCell | BE0146 |
| T细胞分选 | MojoSort小鼠CD8 T细胞分选试剂盒 | BioLegend | 480007 |
| ELISA | ELISA试剂盒 | Dayou | 1210002 |
| OVA特异性抗体ELISA试剂盒 | Alpha Diagnostic International | 600-105-OGG | |
| 动物实验 | 荧光素酶底物 | Thermo Life | 103404-75-7 |
| 免疫荧光 | 抗CD3抗体 | Abcam | ab135372 |
| 抗CD19抗体 | Abcam | ab245235 | |
| 抗F4/80抗体 | Abclonal | a18637 | |
| 抗NK1.1抗体 | Invitrogen | MA1-70100 | |
| 抗cTnT抗体 | Abcam | ab8295 | |
| 抗HepPar-1抗体 | -- | sc-58693 | |
| 抗SP-C抗体 | Abcam | ab90716 | |
| 抗synaptopodin抗体 | Synaptic Systems | SYS-163-004 | |
| 荧光显微镜 | DMi8荧光显微镜 | Leica | -- |
| 细胞刺激 | 莫能菌素钠盐 | Abcam | ab120499 |
| 离子霉素钙盐 | Abcam | ab120370 | |
| 佛波醇12-肉豆蔻酸酯13-乙酸酯 | Abcam | ab120297 | |
| 流式抗体 | Zombie Violet固定活力试剂盒 | BioLegend | 423114 |
| 抗小鼠CD45抗体 | BioLegend | 103114 | |
| 抗小鼠CD3e抗体 | BioLegend | 100306 | |
| 抗小鼠CD4抗体 | BioLegend | 100408 | |
| 抗小鼠CD8a抗体 | BioLegend | 100752 | |
| 抗小鼠F4/80抗体 | BioLegend | 111703 | |
| 抗IFN-γ抗体 | BioLegend | 505808 | |
| 抗GzmB抗体 | BioLegend | 396414 | |
| 抗CD206抗体 | BioLegend | 141708 | |
| 抗CD44抗体 | BioLegend | 103012 | |
| 抗CD62L抗体 | BioLegend | 161204 | |
| 细胞清除 | 抗CD4抗体 | BioXCell | BE0003-1 |
| 抗CD8抗体 | BioXCell | BE0061 | |
| 抗NK1.1抗体 | BioLegend | 108701 | |
| 抗CD19抗体 | Lenico | C2849 | |
| 细胞因子检测 | LEGENDplex多因子流式检测试剂盒 | BioLegend | 740621 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| RT-MPs制备 | 辐照剂量(20 Gy)、细胞数量(5×10^6)、收集时间(72小时)、离心参数(1000×g 10 min, 14000×g 2 min, 14000×g 1 h) 阅读提示:Materials and methods, Generation and isolation of RT-MPs |
| 细胞培养 | 培养基(DMEM)、血清(10% FBS)、抗生素(100 μg/mL青霉素/链霉素)、培养条件(37°C,5% CO2) 阅读提示:Materials and methods, Cell lines and cell culture |
| MPE模型建立 | 细胞类型(LLC-luc等)、细胞数量(2×10^5)、注射部位(右侧胸腔,第10或11肋间) 阅读提示:Materials and methods, Animal experiments |
| 治疗给药 | RT-MPs剂量(2 μg/μL,50 μL,胸腔注射,共4次,间隔2天)、PD-1 mAb剂量(10 mg/kg,腹腔注射,共3次,间隔2天) 阅读提示:Materials and methods, Animal experiments |
| 免疫细胞清除 | 清除试剂(抗CD4、抗CD8、氯膦酸盐脂质体、抗NK1.1、抗CD19)、剂量、给药途径、频率 阅读提示:Materials and methods, Immune cell depletion |