抑制性CAR无法保护免受即时T细胞细胞毒性

Inhibitory CARs fail to protect from immediate T cell cytotoxicity

作者信息Maximilian A Funk, Gerwin Heller, Petra Waidhofer-Söllner, Judith Leitner, Peter Steinberger
PMID38384128
期刊Mol Ther
发布时间2024-04-03
DOI10.1016/j.ymthe.2024.02.022

实验完整度

高

包含报告细胞系统、原代T细胞功能实验、单细胞转录组分析和体外杀伤实验等多层级验证。

主要模型

Jurkat TPR报告细胞系 原代人T细胞 K562细胞系 公开scRNA-seq数据集

重点核对

iCAR构建体的表达水平是否匹配 靶细胞上抑制性配体(CD19、PD-L1、HVEM)的表达 共培养时间(如5小时杀伤实验、72小时长期培养) 效应与靶细胞比例(如10:1、3:1、1:1)

摘要

携带抑制性信号域的嵌合抗原受体(iCARs)已被提议作为提高CAR-T细胞疗法肿瘤特异性的策略。iCARs在识别抗原后抑制T细胞活化,从而在CAR-T细胞内编程布尔非门。如果癌细胞不表达iCAR靶抗原而该抗原在健康组织上高表达,则CAR/iCAR共表达的T细胞应杀死癌细胞,但不杀死表达CAR抗原的健康细胞。在本研究中,我们采用了一个成熟的报告细胞系统来证明携带BTLA衍生信号域的iCAR构建体具有高效力。然后我们为临床相关的抗原对B7-H3/CD45和CD123/CD19创建了CAR/iCAR组合,并展示了靶向CD45或CD19的iCAR能有效抑制报告细胞。在原代人T细胞中,αCD19-iCARs能够抑制T细胞增殖和细胞因子产生。令人惊讶的是,iCAR未能否决即时的CAR介导的细胞毒性。同样,过表达PD-1或BTLA的T细胞对表达配体的靶细胞并未表现出受损的细胞毒性,表明这些受体介导的抑制性信号并不能保护CAR-T细胞免受细胞毒性。未来采用配备iCAR的CAR-T细胞进行癌症治疗的方法应监测肿瘤外反应性和潜在的CAR/iCAR-T细胞功能障碍。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
探索iCARs是否能通过抑制性信号域保护CAR-T细胞免于对表达iCAR抗原的健康组织产生细胞毒性,从而提高肿瘤特异性。
核心机制
BTLA信号域能有效抑制转录依赖性效应功能(如细胞因子产生、增殖),但不能提供即时细胞毒性的否决信号,提示细胞毒性对抑制信号的内在耐受性。
主要证据
在Jurkat报告细胞中验证了BTLA的强抑制效力;在原代T细胞中,iCAR抑制了增殖和细胞因子分泌,但在5小时和72小时的杀伤实验中未能保护CD19+靶细胞;PD-1和BTLA过表达同样未能抑制细胞毒性。
研究意义
研究提示基于抑制性受体的iCAR策略可能无法有效防止OTOT细胞毒性,临床应用时应监测肿瘤外反应和潜在的CAR/iCAR-T细胞功能障碍。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

筛选抑制性信号域

比较不同抑制性信号域(BTLA、LILRB1、KIR2DL1等)对T细胞活化的抑制能力。

在Jurkat报告细胞中表达PD-1嵌合体,与表达mb-αCD3和PD-L1的TCS细胞共培养,检测NF-κB和NFAT报告基因活性。

2

优化BTLA信号域

测试BTLA信号域在CAR/iCAR组合中的抑制效果,并研究抗原密度的影响。

使用X15-scTCR iCAR模型,脉冲不同浓度Tax肽,检测CAR介导的报告基因抑制。

3

识别临床相关CAR/iCAR组合

确定适用于临床相关OTOT问题的CAR/iCAR抗原对。

重新分析公开scRNA-seq数据集,检查CD123/CD19和B7-H3/CD45在肿瘤和正常组织中的表达模式。

4

验证CAR/iCAR组合在报告细胞中的功能

评估αCD19-BTLA iCAR和αCD45-BTLA iCAR对CAR活化的抑制能力。

在Jurkat TPR细胞中共表达αCD123-ζ CAR和αCD19-iCAR或αB7H3-ζ CAR和αCD45-iCAR,与表达相应抗原的K562细胞共培养,检测报告基因活性。

5

评估iCAR对第二代CAR的影响

验证αCD19-BTLA iCAR是否能抑制第二代CAR(28ζ和BBζ)的活化。

在报告细胞中共表达αCD123-28ζ/BBζ CAR和αCD19-BTLA iCAR,与CD123和CD19双阳性靶细胞共培养,检测报告基因抑制。

6

在原代T细胞中评估iCAR功能

测试αCD19-BTLA iCAR对原代CAR-T细胞增殖、细胞因子产生和CD25上调的影响。

从健康供体PBMCs制备αCD123-28ζ CAR-T细胞,共表达αCD19-BTLA iCAR、PD-1或BTLA,与表达相应配体的K562细胞共培养4天,分析增殖、细胞因子和CD25表达。

7

评估iCAR对细胞毒性的影响

检测iCAR或抑制性受体是否能保护靶细胞免受CAR-T细胞杀伤。

进行5小时Annexin V杀伤实验和72小时长期共培养实验,比较iCAR靶抗原表达与否靶细胞的存活。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI 1640培养基Thermo Fisher Scientific--
胎牛血清Thermo Fisher Scientific--
青霉素-链霉素----
嘌呤霉素----
L-谷氨酰胺----
Lymphoprep分离液Technoclone--
FACSCalibur流式细胞仪BD Bioscience--
LSRFortessa流式细胞仪BD Bioscience--
SH800分选仪Sony Biotechnology--
B7-H3-PE抗体BioLegend--
BTLA-APC抗体BD Bioscience--
CD107a-FITC抗体BioLegend--
CD123-PE抗体BioLegend--
CD19-PE抗体BioLegend--
CD25-PE抗体BioLegend--
CD4-BV421抗体BioLegend--
CD45-PE抗体BioLegend--
CD8-PerCP抗体BioLegend--
HVEM-PE抗体BioLegend--
mCD45.2-APC抗体BioLegend--
PD-L1-PE抗体BioLegend--
PD-1-APC抗体BioLegend--
SA-FITC抗体BioLegend--
SA-PE抗体BioLegend--
Strep-II标签生物素抗体GenScript--
V5标签抗体Thermo Fisher Scientific--
crRNAIDT--
tracrRNAIDT--
Cas9蛋白----
Neon转染系统Thermo Fisher Scientific--
Gentra Puregene细胞试剂盒Qiagen--
Lipofectamine 3000转染试剂Thermo Fisher Scientific--
全T细胞分离试剂盒Miltenyi Biotec--
Dynabeads磁珠Thermo Fisher Scientific--
IL-2Peprotech--
IL-7Peprotech--
IL-15Peprotech--
OKT3抗体Ortho Pharmaceutical Corporation--
抗CD28抗体BioLegend--
CellTrace Violet增殖染料Thermo Fisher Scientific--
Annexin V-FITCBioLegend--
Annexin V-PEBioLegend--
HCYTOMAG-60K试剂盒Merck--
HCD8MAG-15K试剂盒Merck--
Luminex 100系统Luminex--
FlowJo 10.8.2软件Becton Dickinson--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
报告细胞实验
TPR细胞系(JE6.1 TPR)、TCS或K562刺激细胞、共培养时间(18-24小时)、报告基因(NF-κB、NFAT、AP1)
阅读提示:Methods 'Reporter cell assays'
原代T细胞功能实验
PBMCs供体数量、T细胞分离方法、共培养时间(4天)、E:T比例(5:2)、检测指标(增殖、细胞因子、CD25)
阅读提示:Methods 'Determining T cell proliferation and upregulation of CD25' 和 'Cytokine profiling'
细胞毒性实验
效应细胞与靶细胞比例(10:1、3:1、1:1)、共培养时间(5小时)、Annexin V染色方法
阅读提示:Methods 'Annexin V cytotoxicity assay'
长期共培养实验
共培养时间(72小时)、E:T比例(1:1、1:3、1:10)、靶细胞计数方法、细胞因子检测
阅读提示:Methods 'Combined cytotoxicity and cytokine profiling assay'