AAV-CRISPR基因编辑被预先存在的Cas9免疫所抵消

AAV-CRISPR Gene Editing Is Negated by Pre-existing Immunity to Cas9

作者信息Ang Li, Mark R Tanner, Ciaran M Lee, Ayrea E Hurley, Marco De Giorgi, Kelsey E Jarrett, Timothy H Davis, Alexandria M Doerfler, Gang Bao, Christine Beeton, William R Lagor
PMID32348718
期刊Mol Ther
发布时间2020-06-03
DOI10.1016/j.ymthe.2020.04.017

实验完整度

高

包含动物免疫模型、AAV递送、流式细胞术、TUNEL染色、qPCR、Western blot、深度测序及组织学等多层级验证,且有时间和剂量设计。

主要模型

C57BL/6小鼠模型 SaCas9免疫小鼠 AAV8介导的肝脏基因编辑模型

重点核对

SaCas9免疫剂量25μg AAV-CRISPR递送剂量5×10^11基因组拷贝 AAV-GFP递送剂量2×10^11基因组拷贝 观察时间点1、2、4、6、12周 CD8+ T细胞比例和肝细胞凋亡检测

摘要

腺相关病毒(AAV)载体是体内治疗性基因组编辑中递送CRISPR-Cas9的主要候选载体。然而,基于AAV的递送涉及Cas9核酸酶(一种细菌蛋白)的持续表达。最近的研究表明,人类中普遍存在针对常用Cas9同源物(来自化脓性链球菌的SpCas9和金黄色葡萄球菌的SaCas9)的中和抗体和T细胞。我们在小鼠模型中测试了预先存在的对SaCas9的免疫力是否会对使用AAV包装CRISPR-Cas9进行肝脏基因组编辑构成障碍。尽管在预先存在SaCas9免疫力的小鼠肝脏中发生了有效的基因组编辑,但这伴随着肝脏中CD8+ T细胞比例的增加。这种细胞毒性T细胞反应的特征是肝细胞凋亡、重组AAV基因组的丢失以及基因编辑细胞的完全消除,随后是代偿性肝脏再生。我们的结果对基于CRISPR-Cas9的体内基因组编辑在肝脏中的有效性和安全性提出了重要关注。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
预先存在的Cas9免疫力是否构成AAV-CRISPR介导的肝脏基因组编辑的障碍?
核心机制
预先存在的SaCas9免疫力导致记忆CD8+ T细胞活化,在AAV表达SaCas9后,这些T细胞攻击表达Cas9的肝细胞,引起肝细胞凋亡和基因编辑细胞的清除,随后触发代偿性肝再生。
主要证据
通过DTH实验证实免疫记忆存在;在AAV-CRISPR处理后,流式细胞术检测到肝脏CD8+ T细胞增加,TUNEL染色显示凋亡细胞增多,深度测序显示编辑率从20.5%降至3.4%。
研究意义
研究提示预先存在的Cas9免疫力可能对体内肝脏基因编辑的有效性和安全性构成重大挑战,对临床试验设计具有重要意义,并强调需开发新的体内递送方法。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立抗SaCas9免疫记忆

验证SaCas9蛋白能否在小鼠中诱导免疫记忆反应。

使用DTH实验,小鼠免疫25 μg SaCas9或100 μg卵清蛋白,一周后于耳部攻击,测量耳肿胀。

2

AAV-CRISPR递送及免疫反应评估

评估预先存在SaCas9免疫力的小鼠在接受AAV-CRISPR后,肝脏中免疫反应及基因编辑细胞的命运。

将免疫后的小鼠通过腹腔注射AAV8-CRISPR(靶向Ldlr)和AAV8-GFP,在不同时间点(1、2、4、6、12周)采集肝脏和血液,进行流式细胞术、qPCR、TUNEL、ALT、Ki-67染色、Western blot和深度测序分析。

3

识别T细胞表型和功能

明确AAV-CRISPR处理后肝脏中T细胞亚群的特性和活化状态。

在SaCas9免疫后1周,注射AAV-CRISPR或AAV-GFP或生理盐水,2周后收获肝脏和脾脏,通过流式细胞术分析T细胞、CD8+ T细胞、记忆表型(CD8+CD44+CD62L-)、活化标记(CD69+)、Treg(Foxp3+)等。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
免疫记忆诱导
小鼠品系(C57BL/6),年龄(6-8周),性别(雄性),免疫剂量(SaCas9 25 μg或卵清蛋白100 μg),佐剂(完全弗氏佐剂),免疫途径(皮下),免疫后时间(1周),挑战剂量(16 μg),挑战部位(耳廓),测量时间(24小时)
阅读提示:材料与方法:DTH检测(Delayed-Type Hypersensitivity Assay)
AAV递送
AAV血清型(AAV8),靶基因(Ldlr),SaCas9载体剂量(5×10^11 GCs),GFP载体剂量(2×10^11 GCs),给药途径(腹腔注射),稀释体积(300 μL PBS),观察时间(1、2、4、6、12周)
阅读提示:材料与方法:免疫与AAV给药(Immunization and AAV Administration)
免疫反应评估
流式细胞术抗体及染色方案,CD8+ T细胞比例检测时间点(1-4周),TUNEL染色(凋亡),ALT活性检测(峰值2周),Ki-67染色(增殖),qPCR检测(CD8、Ki-67)
阅读提示:材料与方法:流式细胞术(Flow Cytometry),Western blots,qPCR分析(qPCR Analysis);图2
基因编辑效率检测
基因组DNA提取方法,PCR引物及深度测序平台(MiSeq),编辑率计算(Indel频率),时间点(6周和12周)
阅读提示:材料与方法:Indel量化(Indel Quantification by Deep Sequencing);图3F