过表达NaChBac钠通道的背根神经节移植改善完全性脊髓损伤后的运动功能

Transplantation of dorsal root ganglia overexpressing the NaChBac sodium channel improves locomotion after complete SCI

作者信息Sonia Hingorani, Guillem Paniagua Soriano, Carlos Sánchez Huertas, Eva María Villalba Riquelme, Eric López Mocholi, Beatriz Martínez Rojas, Ana Alastrué Agudo, Sebastián Dupraz, Antonio Vicente Ferrer Montiel, Victoria Moreno Manzano
PMID38556794
期刊Mol Ther
发布时间2024-06-05
DOI10.1016/j.ymthe.2024.03.038

实验完整度

高

包含体外细胞实验(电生理、钙成像、Western blot、分泌组分析)、两种体内脊髓损伤模型(单侧半切和双交错半切)及组织学和行为学分析,并进行了机制验证。

主要模型

大鼠新生DRG神经元 Neuro-2A(N2A)细胞系 C57BL/6小鼠脊髓损伤模型(单侧半切和双交错半切)

重点核对

NaChBac表达对DRG神经元固有兴奋性的影响 NaChBac表达对N2A细胞增殖和存活的影响 NaChBac-DRG移植对CST保留的作用 NaChBac-DRG移植对运动功能恢复的影响

摘要

脊髓损伤(SCI)是一种目前缺乏治疗方法的使人衰弱的疾病。严重SCI导致损伤平面以下大部分脊髓上输入和神经元活动丧失,加上内源性自发再生能力有限,即使在解剖学不完全损伤中也可能导致完全功能丧失。我们假设移植经基因修饰表达NaChBac钠通道的成熟背根神经节(DRGs)可作为功能性完全性SCI的一种治疗选择。我们发现NaChBac表达增加了DRG神经元的固有兴奋性,并在体外促进了细胞存活和神经营养因子分泌。与对照组相比,表达NaChBac的解离DRG移植在损伤后7周改善了自主运动功能。移植表达NaChBac的DRG的动物也拥有更高的微管蛋白阳性神经元纤维和髓鞘保留,尽管血清素能下行纤维仍不受影响。我们观察到损伤和移植后14天皮质脊髓束的早期保留,但在损伤后7周消失。然而,移植表达NaChBac的DRG通过增加损伤尾侧VGLUT2接触的数量增加了神经元兴奋性输入。我们的工作表明,移植表达NaChBac的解离DRG可以挽救显著的运动功能,在损伤尾侧保留兴奋性神经元中继活动。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
移植过表达NaChBac钠通道的成熟DRG神经元是否能够作为功能性完全性SCI的治疗选择,并改善运动功能?
核心机制
NaChBac表达增加DRG神经元固有兴奋性,促进细胞存活和神经营养因子分泌,移植后通过保留兴奋性输入和促进中继回路形成,改变损伤尾侧兴奋/抑制平衡,偏向兴奋,从而改善运动功能。
主要证据
体外实验显示NaChBac增加DRG神经元兴奋性、Ca2+内流和cAMP水平,并促进N2A细胞存活和分泌BDNF、GDNF等神经营养因子;体内实验显示NaChBac-DRG移植改善运动功能(BMS评分和梯梁测试),增加损伤区VGLUT2接触,减少VGAT接触,并提高髓鞘和神经元纤维保留。
研究意义
研究表明维持脊髓损伤后损伤尾侧的兴奋/抑制平衡和促进中继回路形成对于功能恢复至关重要,并强调了开发针对这一目标的新治疗策略的重要性。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

验证NaChBac对DRG神经元兴奋性的影响

探究NaChBac表达是否改变DRG神经元的电生理特性。

对大鼠新生DRG神经元进行慢病毒转导表达NaChBac-GFP或Control-GFP,采用全细胞膜片钳记录分析动作电位、后超极化、基强度、放电频率、静息膜电位及电压门控电流,并使用Fluo-4AM进行钙成像。

2

验证NaChBac对细胞存活和神经营养因子分泌的影响

探究NaChBac表达是否促进细胞存活并增加神经营养因子分泌。

在N2A细胞中稳定表达NaChBac-GFP或Control-GFP,检测增殖曲线、缺氧诱导的细胞死亡,并通过Western blot检测p-AKT、p-mTOR、Bcl2、cleaved caspase 3水平。在DRG培养物中收集培养基,使用生长因子阵列和ELISA检测分泌因子。

3

单侧半切SCI模型中评估NaChBac-DRG移植的早期效应

评估NaChBac-DRG移植对损伤后CST保留和细胞迁移的影响。

在成年小鼠T8右侧半切后立即移植NaChBac-GFP或Control-GFP DRG细胞(150,000细胞/3 μL),在AAV-Syn-RFP标记CST后2周分析细胞存活、迁移和CST纤维保留。

4

双交错半切SCI模型中评估NaChBac-DRG移植的功能恢复

评估NaChBac-DRG移植在严重慢性SCI模型中对运动功能恢复的影响。

在成年小鼠中实施T7右和T10左交错半切,立即移植NaChBac-GFP、Control-GFP DRG或不移植。通过BMS评分、水平梯梁测试和Von Frey测试评估功能恢复,持续7周。

5

损伤后组织学分析

鉴定NaChBac-DRG移植对神经元纤维、髓鞘和突触输入的影响。

对脊髓切片进行免疫组化染色,分析GFAP、MBP、β-III-tubulin、5HT、VGLUT1/2、VGAT、NeuN、Iba-1等标记物,量化损伤面积、纤维保留和突触接触数。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证免疫效应
验证机制链路
数据分析与统计

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM F12培养基----
胎牛血清----
胶原酶IASigmaC9891
Tryple酶GIBCO12563-011
神经生长因子Gibco13257-019
多聚赖氨酸SigmaP2636
层粘连蛋白SigmaL2020
阿糖胞苷SigmaC1768
pLL3.7-NaChBac-eGFP质粒Addgene11795
pLL3.7空载体Addgene11795
台盼蓝Thermo Fisher Scientific15250061
蛋白酶抑制剂混合物Roche Diagnostics11836153001
BCA蛋白定量试剂盒Thermo Fisher Scientific23225
磷酸化mTOR抗体Cell Signaling2971
mTOR抗体Cell Signaling2972
Bcl2抗体Santa Cruz Biotechnologysc-7382
磷酸化AKT抗体Santa Cruz Biotechnologysc-293125
caspase 3抗体Cell Signaling9622s
AKT抗体Cell Signaling4691s
β-肌动蛋白抗体SigmaA1978
ECL Plus蛋白质印迹检测试剂GE Healthcare--
Uvi-Tech Alliance Q9化学发光成像系统Uvi-Tec--
EPC10放大器HEKA Elektronik--
Patchmaster软件HEKA Elektronik--
硼硅酸盐玻璃Warner Instruments--
Flaming/Brown微电极拉制仪P-97Sutter Instruments--
Axiovert 200倒置显微镜Carl Zeiss--
Fluo-4AM钙指示剂Thermo FisherF14201
Leica TSP-SP8共聚焦显微镜Leica--
XBridge C18色谱柱Waters186005626
大鼠生长因子阵列1RayBiotechAAR-GF-1-2
BDNF酶联免疫吸附测定试剂盒Biogen CientíficaCC-SEA011Hu
显微手术刀片Sharpoint Angiotech72-2201
4/0单丝缝线BraunG2022004
Hamilton注射器Hamilton80308
纳升注射器Harvard Apparatus--
pAAV-hSyn-EGFP腺相关病毒Addgene50465
pAAV-hSyn-RFP腺相关病毒Addgene22907
Tissue-Tek OCT包埋剂Sakura Finetek Europe BV--
GFAP抗体DAKOZ0334
β-III-微管蛋白抗体EXBIO11-264-c100
GFP抗体Abcamab13970
RFP抗体Synaptic Systems390004
血清素抗体SigmaS5545
VGLUT1抗体Synaptic Systems135305
VGLUT2抗体Synaptic Systems135402
VGAT抗体Synaptic Systems131002
NeuN抗体Merck MilliporeABN91
Iba-1抗体FUJIFILM Wako Chemicals Europe019-19741
MBP抗体Abcamab69863
纤连蛋白抗体Santa Cruzsc-8422
DAPI染色液SigmaD9542
Mowiol封片剂Sigma81381
Aperio Versa扫描仪Leica--
Zeiss Apotome显微镜Zeiss--
Zeiss光片荧光显微镜Zeiss--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
DRG神经元培养
DRG来源(P3-P4大鼠),酶消化条件(胶原酶IA和Tryple),培养基质(poly-L-lysine和laminin),AraC浓度(5 μM),NGF浓度(2.5 ng/μL),转导MOI(10)
阅读提示:Materials and methods: Culture of dissociated DRGs
电生理记录
记录温度(约22°C),电极电阻(2-5 MΩ),封接电阻(200 MΩ-2 GΩ),细胞外液和电极内液组成,电压钳方案(从-80到60 mV,10 mV步进),电流钳方案(1秒脉冲0-300 pA,10 pA步进),数据采样率(20 kHz)
阅读提示:Materials and methods: Electrophysiology recordings
动物模型
小鼠品系(雌性C57BL/6,8周龄,约20g),麻醉方案(2%异氟烷),手术(T8右侧半切或T7右和T10左交错半切),移植细胞数(150,000细胞/3 μL),注射速度(2 μL/min),免疫抑制(环孢素20 mg/kg/天),镇痛(丁丙诺啡0.1 mg/kg,每日两次,4天)
阅读提示:Materials and methods: SCI and DRG transplantation
功能评估
BMS评分频率(每周两次),梯梁测试方法,Von Frey测试方法(升序刺激法)
阅读提示:Materials and methods: Locomotion analysis, Von Frey test
组织学分析
切片类型和厚度(石蜡8 μm,冷冻35 μm),抗体稀释度,图像采集和分析方法(阈值,ROI),每只动物切片数量
阅读提示:Materials and methods: Immunohistochemistry, Quantification approaches