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49 人阅读发布时间:2025-09-30 16:04
冷冻组织拿出来一解冻就黏糊糊,细胞核根本提不完整!”“离心后核层找不准……做动物组织研究的小伙伴,是不是总被细胞核提取的难题绊住脚?别慌!今天给大家安利一款“科研神器”——百奥益康动物组织细胞核悬液制备试剂盒(BA3302),从材料准备到质控收尾,手把手教你搞定提核全流程,让实验效率直接拉满!
一、3 大优势戳中科研痛点
1、“通用款”不挑组织:不管是肝脏、心脏还是肾脏,冷冻状态下都能高效提核,不用再为不同组织换不同方案;
2、核纯度拉满:特配的分层液能精准分离细胞核与杂质,离心后核层清晰可见,后续做单细胞核转录组测序、单细胞 ATAC 测序等相关实验;
3、操作超友好:无需复杂仪器,跟着步骤走,新手也能在1小时内完成提核,再也不用熬夜跟组织“死磕”!

二、5 步搞定冷冻组织提核
第一步:材料“全家福”,提前备齐不慌神
工具类:手剪、镊子、组织研磨仪、水平离心机、细胞计数仪;
试剂类:裂解液、前悬液、后悬液,及添加液;如果要做RNA相关实验,别忘了加RNase抑制剂
耗材类:40μm细胞筛、低吸附枪头、5mL/15mL离心管
第二步:组织“碎碎乐”,研磨过滤要细心
向含锆珠的研磨管中加入1mL裂解液,立即放入冷冻组织块(勿解冻),用研磨仪研磨至无块状、呈细腻匀浆。静置2–3分钟后,将匀浆经40μm细胞筛过滤至15mL离心管,以去除组织碎片,便于后续提核。
第三步:离心“分层术”,找准核层是关键
用1mL前悬液冲洗研磨管和细胞筛,把残留的细胞核“冲”进离心管,4℃、500xg离心5分钟,弃上清;用300μL前悬液重悬沉淀,再加入300μL PB1混匀并转移至新管。缓慢沿管底加入600μL PB2,再缓慢加入600μL PB3,确保液层不混合,注意枪头要伸到管底,别让液体混合——这样离心后会形成三层,细胞核就乖乖待在PB2和PB3的交界处!
第四步:核层“搬家记”,清洗重悬有技巧
离心结束后,你会看到管里有三层液体:最上面是碎片层,中间薄薄的一层就是核层,最下面是废液。弃除上层约1000μL碎片层,小心吸取中间400μL核层至新管。加入2mL后悬液(核层体积的5倍),轻柔混匀后于4℃、700xg离心5分钟;弃上清,根据后续实验需求,用50-200μL后悬液重悬沉淀以获得所需浓度。
第五步:质控“收尾战”,干净核样马上用
用细胞计数仪明场观察,如果还有大于细胞核的碎片,就用10μm细胞筛再滤一次;要是背景干净,直接跳过;质控合格后,细胞核要马上用于后续实验——新鲜的核样才能保证实验结果准确,别放太久哦!
三、注意事项
1、无菌与低温:全程需无菌操作,所有步骤尽量在湿冰上进行,器材需提前预冷。
2、离心要求:必须使用水平离心机,严格按照步骤设置转速与时间(如纯化步骤 3000×g、20 分钟),避免细胞核丢失或破裂。
3、分层操作:添加 PB2、PB3 时需控制液体流速,保持手部稳定,确保溶液清晰分层,避免核层污染。
4、样本失效:新鲜样本采集后及时保存并快速操作,冻存样本避免反复冻融,解冻后立即使用。
四、数据展示

如果还有操作疑问,欢迎在评论区留言,我们会一一解答,也别忘了分享给身边需要的科研伙伴,一起高效做实验!
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