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17 人阅读发布时间:2026-03-26 08:53

治疗现状:ICI(如抗PD-1、抗CTLA-4抗体)在黑色素瘤等癌症治疗中实现了前所未有的持久疗效,但患者反应呈现显著的异质性(heterogeneous)——部分患者原发耐药,部分获得性耐药。
未解难题:尽管临床应用已逾十年,如何预测个体患者疗效、优化联合用药方案仍是重大挑战。
关键发现:近年研究表明,肠道微生物组是预测和驱动免疫治疗结局的核心肿瘤外在因素(tumour-extrinsic factor)。特定菌群组成与ICI疗效显著相关。
机制复杂性:肠道微生物组通过肠粘膜(物理屏障)与宿主免疫系统形成稳态互作。菌群失调可破坏上皮细胞连接、促进病原体易位、诱发慢性炎症,进而影响抗肿瘤免疫。
研究空白:临床上缺乏在免疫治疗期间进行肠道活检的指征,无法原位解析微生物-宿主互作的分子机制,也难以区分肠上皮细胞与微环境其他组分的作用。
动物模型:小鼠与人存在解剖、功能、免疫及微生物学差异,且成本高、周期长、伦理受限,转化价值有限。
2D细胞培养:缺乏细胞异质性和结构复杂性,无法模拟生理屏障。
3D类器官:虽具细胞多样性,但存在结构倒置(顶端腔室封闭于内腔)、无法施加机械刺激(蠕动)、难以与微生物共培养等缺陷。
微流控机遇:微流控技术可克服上述限制,实现微型化、高分辨率检测和生理力学模拟,但亟需整合多种功能(多细胞共培养、ECM基质、机械刺激、菌群暴露)的集成平台。
生理结构还原:创新性地将血管通道(HMEC-1人微血管内皮细胞)与肠道通道(hiPSC来源类器官或Caco-2/HT-29MTX细胞)通过胶原基质(ECM-like gel)分隔,形成三维管状结构
机械仿生:通过专利驱动技术(deformation 10-15%, frequency 0.2Hz)模拟肠道蠕动,诱导形成3D绒毛样结构(villi-like structures)和极化上皮屏障,本文中的器官芯片由意大利制造商BiomimX Srl提供

BiomimX动态器官芯片系统,咨询:北京基尔比官网
双通道独立验证:证实上皮侧与血管侧具有独立且选择性的屏障功能(Papp分别为1.01×10⁻⁷和1.41×10⁻⁷ cm/s)
患者来源微生物组:首次将黑色素瘤患者的粪便样本(响应者vs非响应者)直接整合到芯片中,建立"患者-芯片"(patient-on-chip)研究范式
多组学整合分析:结合转录组测序(RNA-seq)、宏基因组测序(metagenomics)和多重ELISA,实现微生物-宿主互作的实时定量检测
非响应者(Non-responders, NR)特征:粪便微生物组富含脂多糖(LPS)合成相关基因,通过激活TLR-4信号通路,导致肠道上皮紧密连接蛋白(ZO-1、E-cadherin)和β-catenin显著降低,屏障功能破坏
响应者(Responders, R)特征:粪便中鞭毛蛋白(flagellin)相关基因丰度更高,通过TLR-5信号通路和IL-1β/IL-10信号维持肠道稳态,保护屏障完整性
促炎vs稳态平衡:非响应者微生物组诱导强烈的促炎反应(TNF、IL-6、VEGF高表达),抑制细胞周期和应激缓冲能力;响应者则维持细胞增殖和氧化应激缓冲能力(Nrf2通路)
内皮激活效应:非响应者粪便不仅破坏上皮屏障,还激活血管内皮细胞(ICAM-1上调),促进T细胞黏附,提示系统性炎症状态
菌群移植模拟:响应者粪便上清或纯化的鞭毛蛋白可逆转非响应者样本或纯LPS引起的屏障功能障碍,恢复ZO-1和E-cadherin表达
精准治疗靶点:证实TLR-5激动剂(flagellin)具有潜在治疗价值,可缓解LPS诱导的肠道炎症,为改善ICI疗效提供新策略
人鼠保守性:该芯片的转录组响应(3,278个差异表达基因)与无菌小鼠vs无特定病原菌(SPF)小鼠的体内数据高度一致(χ² test, P=0.0001),证实其作为临床前替代模型的可靠性

4.1 预测黑色素瘤患者对ICI治疗的个体化反应
4.2 筛选和验证微生物组靶向治疗(如FMT、益生菌、LPS抑制剂)
4.3 解析免疫治疗相关肠炎(irAEs)的发生机制

5.1 整合血管化结构(内皮细胞)、3D上皮屏障和ECM基质
5.2 引入蠕动样机械刺激(peristalsis-like motion)
5.3 直接整合患者粪便微生物组(responsive vs non-responsive)
5.4 建立可预测ICI疗效、解析微生物-宿主互作机制的临床前替代模型


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