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212 人阅读发布时间:2025-07-16 09:22
J53大肠杆菌(Escherichia coli J53)是一种实验室常用的受体菌株,广泛应用于分子生物学研究,特别是在细菌接合(Conjugation)、质粒转化(Transformation)和基因克隆(Gene Cloning)等实验中。该菌株具有较高的转化效率和遗传稳定性,是研究抗生素抗性基因、质粒传递及细菌遗传学的理想模型。
J53菌株通常可从标准菌种保藏中心(如ATCC、CCTCC等)获取,也可通过实验室传代保存。若需从环境或混合菌群中分离J53大肠杆菌,可采用以下步骤:
选择性培养基:使用含特定抗生素(如链霉素或氨苄青霉素)的LB琼脂平板,抑制非目标菌生长。
划线分离:将样品稀释后划线培养,37℃孵育16-24小时,挑取单菌落进行纯化。
PCR或测序验证:通过16S rRNA基因测序或特异性引物PCR确认菌株身份。
LB培养基(Luria-Bertani):最常用,适合常规培养。
SOC培养基:适用于电转化后的复苏培养,提高转化效率。
M9最小培养基:用于研究J53在营养限制条件下的代谢特性。
温度:37℃(最适生长温度)。
pH:7.0-7.4(LB培养基通常无需调节)。
氧气需求:需氧培养,摇床转速200-250 rpm促进通气。
为确保菌株长期稳定,可采用以下保存方式:
斜面保存:接种于LB琼脂斜面,4℃保存。
穿刺保存:使用半固体琼脂穿刺培养,4℃可维持1-2个月。
甘油冻存法:
取对数生长期菌液与无菌甘油(终浓度15-20%)混合。
分装至冻存管,-80℃保存。
冷冻干燥法:适用于菌种保藏中心,可保存数十年。
避免污染:严格无菌操作,定期检测培养基和试剂的无菌性。
防止质粒丢失:若J53携带抗性质粒,需在培养基中添加相应抗生素。
控制培养时间:过度培养可能导致菌体自溶或质粒不稳定。
避免反复冻融:长期保存的菌株应分装,减少冻融次数。
| 难点 | 可能原因 | 解决方案 |
|---|---|---|
| 生长缓慢 | 培养基成分不足、温度不适 | 更换新鲜培养基,调整培养条件 |
| 质粒丢失 | 抗生素失效或未添加 | 检测抗生素活性,确保选择性压力 |
| 污染 | 操作不当或培养基污染 | 严格灭菌,使用新鲜培养基 |
| 转化效率低 | 感受态细胞制备不佳 | 优化CaCl₂法制备感受态细胞或使用电转化 |
基因克隆与表达:J53常用于质粒扩增和重组蛋白表达。
细菌接合实验:研究质粒(如F质粒)的水平基因转移机制。
J53可用于研究耐药基因的传播机制,评估新型抗生素效果。
作为底盘细胞,用于构建基因回路和代谢工程改造。
疫苗开发:作为重组蛋白表达的宿主。
环境监测:用于检测环境中的基因水平转移现象。
J53大肠杆菌作为一种经典实验室菌株,在基因工程、微生物学和医学研究中具有重要价值。掌握其正确的培养、保存及优化方法,可显著提高实验效率。未来,随着合成生物学和基因编辑技术的发展,J53的应用前景将进一步扩大。
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