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69 人阅读发布时间:2025-06-25 10:49
人胃癌细胞系TMK1是胃癌研究领域的重要模型之一,尤其因其来源于未分化胃癌组织而备受关注。该细胞系在研究胃癌发生发展机制、药物筛选、侵袭转移等方面具有重要价值。然而,TMK1细胞相较于一些常用肿瘤细胞系,其复苏和培养过程存在一定的特殊性及难点。智立中特(武汉)生物科技有限公司凭借丰富的细胞培养经验,特此撰文详述TMK1细胞的标准化复苏、培养流程,并深入剖析其培养过程中的关键难点及应对策略,助力科研人员高效、稳定地开展相关研究。
复苏是将冻存的细胞从液氮中取出、解冻并重新建立体外培养的过程。操作不当极易导致细胞死亡或状态不佳。请严格遵循以下步骤:
准备工作 (至关重要!):
预热: 提前将完全培养基(通常为含10-20%优质胎牛血清(FBS)的RPMI-1640或DMEM)、PBS缓冲液或HBSS置于37°C水浴中预热。准备15ml或50ml无菌离心管。
消毒: 彻底清洁超净工作台,用75%酒精擦拭台面及所需物品(移液器、枪头、离心管、培养瓶等)。佩戴无菌手套、口罩、实验服。
水浴锅: 设置恒温水浴锅温度为37°C,水位需足够浸没冻存管液面以上。
防护: 准备好液氮罐防护手套和面罩/护目镜(防止冻存管爆裂)。
快速取出与解冻:
迅速从液氮罐中取出目标TMK1细胞冻存管(确认标签信息无误)。
立即 将冻存管放入37°C水浴中,轻柔并持续地摇晃,使冻存液在 60-90秒内完全融化。切勿将冻存管颈部浸入水中以防污染。解冻过程务必迅速!
移出冻存液与稀释:
用75%酒精彻底擦拭冻存管外壁消毒。
在超净工作台内,用无菌移液器将冻存管内细胞悬液缓慢转移至装有5-10ml预热的完全培养基或PBS/HBSS的离心管中。此步骤旨在稀释冻存液中的DMSO,减少其对细胞的毒性。
离心洗涤:
设置离心机参数:室温, 200-300g, 离心5-8分钟。
小心弃去上清液,尽量去除残留的DMSO和冻存液。
重悬与接种:
用适量(如1-2ml)预热的新鲜完全培养基轻柔吹打细胞沉淀,制成单细胞悬液。避免剧烈吹打产生气泡损伤细胞。
将细胞悬液接种到预先加入适量(如5-8ml)新鲜完全培养基的T25培养瓶(或其他合适规格培养器皿)中。推荐初始接种密度稍高一些(例如,1支1ml冻存管复苏后接种1个T25瓶),有助于细胞更快贴壁和适应环境。
轻柔晃动培养瓶,使细胞分布均匀。
培养与观察:
将培养瓶放入37°C, 5% CO2, 饱和湿度的培养箱中。
复苏后24小时内避免频繁移动或观察培养瓶,让细胞静置贴壁。
24小时后可在显微镜下首次观察细胞贴壁情况(应可见部分细胞贴壁,形态可能略圆)。此时可轻柔更换全部或一半培养基(取决于冻存液稀释程度和细胞状态),移除死细胞和残留DMSO。
培养基: 推荐使用RPMI-1640或DMEM基础培养基,添加10-20% 优质、经过验证的胎牛血清(FBS)。血清质量对TMK1生长至关重要。添加1%双抗(青霉素-链霉素)。
培养条件: 37°C, 5% CO2, 饱和湿度。确保培养箱温度、CO2浓度稳定,定期清洁消毒。
换液:
细胞贴壁生长后,通常每2-3天更换一次新鲜完全培养基。
换液时动作轻柔,避免直接冲刷细胞层。吸弃旧培养基,沿瓶壁缓慢加入预热的新鲜完全培养基。
传代:
时机: 当细胞融合度达到80-90% 时进行传代。过度融合可能导致细胞状态下降甚至分化。
消化:
吸弃旧培养基。
用预热的PBS轻柔洗涤细胞层1-2次,去除血清和死细胞。
加入适量(覆盖细胞层即可)预热的0.25%胰蛋白酶-EDTA溶液。
室温或37°C孵育,密切镜下观察。TMK1细胞贴壁较牢,但消化时间不宜过长(通常1-3分钟)。当大部分细胞变圆、边缘卷起时立即终止消化。
终止: 加入2-3倍于胰蛋白酶体积的含血清的完全培养基终止消化。
收集与离心: 用移液器轻柔吹打瓶壁,使细胞完全脱落分散,形成单细胞悬液。转移至离心管,200-300g离心5分钟。弃上清。
重悬与接种: 用新鲜完全培养基重悬细胞沉淀,按1:3至1:6的比例接种到新的培养瓶中(根据实验需求和细胞生长速度调整)。加入足量新鲜培养基。
冻存:
选择对数生长期、状态良好的细胞。
常规方法消化收集细胞,计数。
用含10% DMSO的完全培养基(或商品化无血清冻存液)重悬细胞至适当密度(如5×10^6 - 1×10^7 cells/ml)。
分装至冻存管,做好标记。
采用程序性降温(使用细胞冻存盒或程序降温仪):4°C 30min → -20°C 2-4hr → -80°C过夜 → 次日转移至液氮长期储存。避免直接将冻存管放入-80°C冰箱过夜。
TMK1细胞在培养过程中存在一些公认的挑战,需特别注意:
难点一:对血清质量高度敏感
表现: 血清质量不佳(如批次差异大、内毒素高、促生长因子不足)会导致TMK1细胞贴壁不良、增殖缓慢、形态改变(如变长、分化样)、甚至死亡。
智立中特策略:
严格筛选供应商: 使用知名品牌、经过严格检测(尤其是内毒素、促生长能力测试)的优质胎牛血清(FBS)。
批次预实验: 对新批次血清进行小规模预实验,评估其对TMK1细胞贴壁、增殖速度和形态的影响,合格后方可大批量使用。
血清浓度优化: 根据细胞状态,可在10%-20%范围内优化血清浓度,找到最适合当前批次的浓度。
考虑替代品: 在条件允许下,可探索使用成分明确的无血清培养基或低血清培养基,减少批次差异影响。
难点二:贴壁牢固,消化控制要求高
表现: TMK1细胞贴壁紧密,消化不足难以吹下;但消化过度(时间过长或胰酶浓度过高)会严重损伤细胞膜,导致细胞死亡、传代后状态差。
智立中特策略:
精准控制时间: 必须在显微镜下密切监控消化过程,严格计时,一旦大部分细胞变圆立即终止。推荐使用低浓度胰酶(如0.05%-0.1%胰酶-EDTA)并延长温和消化时间(3-5分钟)可能更安全。
轻柔操作: 终止消化后,吹打细胞动作要极其轻柔,避免产生剪切力损伤细胞。
避免过度消化: 宁可消化不足,用细胞刮辅助刮下少量残留细胞,也不要过度消化。
难点三:生长速度相对较慢,易受环境影响
表现: 相较于一些快速生长的肿瘤细胞系,TMK1增殖速度中等偏慢。对培养环境(温度、CO2、湿度波动)、培养基pH值、抗生素浓度等变化较为敏感。
智立中特策略:
稳定环境: 确保培养箱性能稳定,定期校准温度、CO2浓度和湿度。减少开关培养箱门的频率和时间。
优化培养基pH: 使用新鲜的、充分平衡CO2的培养基(新开瓶或现配现用)。确保CO2浓度设置准确。
谨慎使用抗生素: 双抗是必要的,但避免使用过高浓度。在细胞状态稳定后,可尝试在传代时短期不用双抗,以减轻对细胞的压力(需确保无菌操作严格)。
耐心培养: 给予细胞足够时间恢复和生长,避免频繁传代。
难点四:潜在的污染风险与状态波动
表现: 任何细胞系都存在微生物污染风险。此外,TMK1在传代或环境变化后可能出现状态波动(如短暂生长停滞、形态改变)。
智立中特策略:
严格无菌操作: 这是细胞培养的生命线。所有操作在超净台内进行,规范操作,勤换手套,定期消毒。
定期检测: 定期进行支原体检测。每次复苏或传代后密切观察细胞形态和生长状况。
建立主细胞库和工作细胞库: 尽早冻存足够量的低代数、状态良好的细胞作为种子库(Master Cell Bank)和工作库(Working Cell Bank),避免长期传代导致的遗传漂变和状态下降。定期从低代数库复苏使用。
详细记录: 完整记录培养条件(培养基批次、血清批次、传代时间、密度、观察到的现象等),便于追溯问题和优化方案。
结语
成功复苏和培养TMK1人胃癌细胞,是进行高质量胃癌研究的基础。尽管存在对血清敏感、消化控制难、生长较慢等挑战,但通过严格遵循标准化操作流程、深刻理解其生物学特性、并针对性地实施智立中特总结的难点应对策略(尤其是严控血清质量、精准把握消化、维持环境稳定、坚持无菌操作),科研人员完全能够稳定维持TMK1细胞的良好状态,使其成为探索胃癌奥秘的可靠工具。
智立中特(武汉)生物科技有限公司 专注于为生命科学研究提供高质量的产品和技术服务。我们提供多种优质细胞培养试剂(包括严格质控的血清、培养基、胰酶等),并可提供专业的细胞培养技术咨询与支持。如有TMK1细胞培养的特定问题或需求,欢迎随时联系我们!