Western Blot 服务
技术简介:
蛋白质印迹 (Western blotting) 是通过电泳(SDS-PAGE)区分不同的组分,并转移至固相支持物(NC 膜或者 PVDF 膜),通过特异性试剂(抗体)作为探针,对靶物质进行定性或者半定量检测的一种经典方法。
WB 流程:
客户提供:
尽可能详细的背景资料,包括蛋白的种属、大小、参考文献等。
新鲜样品(组织为 100-150 mg/样,细胞>107 个/样),若为冻存样品,请于 -70 ℃ 以下保存并自备液氮以便运输。一抗,标明来源和稀释度,也可让我司代买。
交付内容
项目报告
WB 原始胶片或者高清扫描结果
服务优势
提供多种常用内参抗体
免费进行一次项目欲实验
项目周期仅需 7 个工作日左右
提供完整的项目报告
实验数据客观真实
120 张膜/天的通量检测
常见问题
常见问题 | 可能原因 | 解决方法 |
条带呈笑脸状 | 凝胶不均匀冷却,电泳时中间比两侧更热 | 降低电泳时的电压 |
条带呈皱眉状 | 凝胶和玻璃挡板底部有气泡;两遍聚合不完全 | 电泳槽中加电泳液时排空玻璃挡板下方的气泡;配胶时充分混匀 |
拖尾 | 样本中蛋白溶解不好 | 上样前对样本煮沸 5 min,离心 1 min |
出现纹理 | 样本中含有不溶性颗粒 | 上样前对样本煮沸 5 min,离心 1 min |
条带偏斜 | 电极不平衡或者加样位置偏斜;凝胶不均匀凝固 | 在未加样孔中加入等量样品缓冲液,配胶时充分混匀 |
条带弥散 | 上样时样品被电泳缓冲液稀释;浓缩胶配制出错或梳齿底部过短 | 上样时自底部往上缓缓加样;使用新配制 AP,按照配方配浓缩胶;梳齿底部至分离胶顶约 1.0~1.5 cm |
条带宽窄不均 | 蛋白浓度不同,上样时体积差异过大 | 浓度高的样本中补充 1*上样缓冲液至各样本体积大致相同 |
没有阳性条带 | 一抗或二抗失效 | 更换抗体,选择现配现用工作液 |
一抗/二抗不匹配 | 更改为同种属及同亚型的抗体底物 | |
发光液失效 | 更换新的发光液 | |
标本中不含目的蛋白或目的蛋白含量太低 | 设置阳性对照,确定样本中是否含靶蛋白;增加标本上样量解决靶蛋白含量低 | |
抗体染色不充分 | 增加抗体浓度;延长孵育时间 | |
溶液中有辣根过氧化酶抑制剂 | 所有溶液和器皿中避免含有叠氮化钠 | |
抗体活性降低 | 选择在有效期内的抗体;工作液现配现用,避免长时间放置 | |
有阳性条带,但条带比较弱 | 样本中目的蛋白含量太低 | 增加标本上样量 |
洗膜过度 | 缩短洗涤时间 | |
曝光时间过短 | 延长曝光时间 | |
封闭过度 | 减少封闭剂的量或缩短时间;换用不同封闭剂类型 | |
蛋白转移不充分 | 优化转膜条件;调整转膜时间;严格按照配方配制转膜液体;如为 PVDF 膜,需提前用 100% 甲醛浸泡 | |
背景高 | 洗膜不充分 | 增加洗液体积和洗涤次数;洗涤液中加入 Tween-20 |
二抗浓度过高 | 降低二抗浓度 | |
二抗的非特异性背景 | 不加一抗,其他操作过程不变,即可验证背景是否由二抗系统来源;重新选择二抗 | |
封闭不充分 | 增加封闭液孵育时间,或者提高温度。选择合适的封闭试剂 | |
抗体与封闭蛋白有交叉反应 | 更换封闭剂;洗涤液中加入 Tween-20 可减少交叉反应 | |
曝光过度 | 缩短曝光时间 | |
非特异性条带(多条带) | 抗体浓度过高 | 降低抗体(一抗、二抗)浓度 |
一抗的特异性不够 | 使用单克隆或者亲和纯化的抗体,保证抗体的特异性 | |
二抗的非特异性结合 | 不加一抗,其他操作过程不变,即可验证背景是否由二抗系统来源;重新选择二抗 | |
蛋白上样量过大 | 降低上样量 | |
蛋白降解 | 避免反复冻融;使用新鲜制备的标本,并使用蛋白酶抑制剂 | |
不同剪切体存在 | 分析不同剪切体的大小并核对 | |
细胞传代过多,导致蛋白变异 | 使用原代或传代少的细胞作对照 | |
背景有不均匀白色斑点 | 转膜过程中有气泡存在 | 仔细检查,避免存在气泡 |
抗体分布不均匀 | 孵育抗体时使用摇床 |
公司简介
武汉爱博泰克生物科技有限公司依托 ABclonal 美国波士顿抗体与蛋白研发中心、中国光谷生物城 (武汉) 抗体生产基地以及上海张江分子酶研发中心,凝聚了十余位全球知名分子和免疫学方面博士,致力于抗体与蛋白技术的研究。详情 >
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